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Analytik von Aminosäuren und biogenen Aminen in fermentierten ...

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3 OPTIMIERUNG DER HPLC- UND GC-METHODEN 54<br />

3.3.1.1.3 Detektion der <strong>Am<strong>in</strong>osäuren</strong> Chromatographische Trennun-<br />

gen<br />

Die Fluoreszenzspektren des Reagenzes bzw. se<strong>in</strong>er Derivate ergaben Maxima bei<br />

e<strong>in</strong>er Anregungswellenlänge <strong>von</strong> 230 nm <strong>und</strong> e<strong>in</strong>er Emissionswellenlänge <strong>von</strong> 445<br />

nm. Als Signalverstärkung wurde die E<strong>in</strong>stellung PMT Ga<strong>in</strong> 10 gewählt.<br />

3.3.1.2 Quantifizierung der <strong>Am<strong>in</strong>osäuren</strong><br />

Zur Quantifizierung der AS-Gehalte <strong>in</strong> den Proben wurden anhand der Injektion der<br />

fünf Standardgemische <strong>von</strong> 5, 10; 50; 100 sowie 200 μM die Regressionsgeraden<br />

(y = ax + b) zu jeder AS über Auswertung der jeweiligen Peakflächen bestimmt. Die<br />

Gleichungen der Regressionsgeraden <strong>und</strong> die Bestimmtheitsmaße s<strong>in</strong>d <strong>in</strong> Anhang<br />

aufgeführt.<br />

3.3.1.3 Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen<br />

Die Nachweisgrenze der e<strong>in</strong>zelnen AS (siehe Kap. 3.2.3) <strong>in</strong> absolut <strong>in</strong>jizierter Stoff-<br />

menge [pmol] s<strong>in</strong>d für die OPA/IBLC- bzw. IBDC-Metohden <strong>in</strong> der Tabelle 3-5 dar-<br />

gestellt. In der vorliegenden Methode wurde als Bestimmungsgrenze für jede Ami-<br />

nosäure 5,0 μM festgelegt.

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