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SERION ELISA classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz
Zusatzreagenz zur Aviditätsbestimmung von
humanen Toxoplasma gondii IgG Antikörpern
- Nur zur In-vitro-Diagnostik -
Nur für den Gebrauch in Verbindung mit geprüften und dafür freigegebenen
SERION ELISA classic Toxoplasma gondii IgG (siehe Qualitätskontrollzertifikat).
Im Aviditätstest ist die gleichzeitige Bestimmung des IgG Antikörpergehalts möglich.
Best.-Nr.: B110AVID
Tests evaluiert: manuell, Immunomat TM* , DSX *
*mit modifizierter Testabarbeitung
INHALTSVERZEICHNIS
1. ANWENDUNGSBEREICH
2. DIAGNOSTISCHE BEDEUTUNG
3. SERION ELISA classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz - TESTPRINZIP
4. INHALT UND ZUSAMMENSETZUNG DER TESTPACKUNG
5. ZUSÄTZLICH BENÖTIGTE MATERIALIEN
6. LAGERUNG UND HALTBARKEIT DER REAGENZIEN
7. DURCHFÜHRUNG DER AVIDITÄTSBESTIMMUNG
7.1 Allgemeine Hinweise
7.2 Übersicht Testablauf
7.3 Testdurchführung
8. TESTAUSWERTUNG
8.1 Berechnung der SERION Aviditätsindizes
8.2 Testgültigkeitskriterien
8.3 Interpretation der Ergebnisse
9. LEISTUNGSMERKMALE
9.1 Präzision
9.2 Prüfung von 148 positiven Blutspendeseren
9.3 Prüfung eines Panels von Seren mit definierter Avidität
10. SICHERHEITSMASSNAHMEN
10.1 Warnhinweise und Vorsichtsmaßnahmen
10.2 Entsorgung
11. LITERATUR
1. ANWENDUNGSBEREICH
Das SERION ELISA classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz (Best.-Nr.: B110AVID)
ist ein Zusatzreagenz, welches im Zusammenhang mit dem SERION ELISA classic Toxoplasma gondii
IgG die Aviditätsbestimmung von Toxoplasma gondii IgG Antikörpern ermöglicht. Die Aviditätsbestimmung
kann einen wichtigen Beitrag leisten zur Abschätzung, ob eine frische Erstinfektion
vorliegt oder der Kontakt mit dem Erreger bereits vor längerer Zeit erfolgte (1, 2, 3).
2. DIAGNOSTISCHE BEDEUTUNG
Im Ablauf einer Immunreaktion kommt es im Allgemeinen zu einer deutlichen Zunahme der durchschnittlichen
Antikörperaffinität (Affinitätsreifung). Hochavide IgG Antikörper korrelieren deshalb
mit einem länger zurückliegenden Infektionszeitpunkt. Kürzlich erworbene Primärinfektionen
zeichnen sich dagegen durch das Auftreten von IgG Antikörpern mit niedriger Avidität aus.
Da eine Toxoplasma Infektion häufig ohne auffällige Symptome verläuft, kommt dem serologischen
Antikörpernachweis eine hohe Bedeutung zu. In der Schwangerschaft besteht die Gefahr einer
Schädigung des Ungeborenen nur bei einer frischen Erstinfektion. Diese erfordert eine umgehende
Therapie der Schwangeren.
Die IgM Antikörperkonzentration steigt bereits kurz nach einer Toxoplasmen Infektion schnell auf
hohe Werte an. Im weiteren Verlauf sinkt die Aktivität wieder ab und verbleibt oft über Monate
bis Jahre auf niedrigem Niveau. Daher ist es bei Toxoplasma gondii nicht möglich, allein durch
den Nachweis von erregerspezifischen IgM Antikörpern eine Primoinfektion zu diagnostizieren. In
einer norwegischen Studie wurden 35.940 Schwangere auf Antikörper gegen Toxoplasma gondii
untersucht (4). Unter den 3.907 Schwangeren, bei denen Toxoplasma gondii IgG Antikörper gefunden
wurden, waren 266 Patientinnen, die Toxoplasma gondii IgM Antikörper aufwiesen. Nur bei 30
dieser 266 Schwangeren korrelierte der Nachweis der IgM Antikörper mit einer Primoinfektion. Die
Aviditätsbestimmung der Toxoplasma gondii IgG Antikörper führt zu einer erweiterten Aussagemöglichkeit
in der Toxoplasma gondii Diagnostik.
3. SERION ELISA classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz - TESTPRINZIP
Die Aviditätsbestimmung von Toxoplasma gondii IgG Antikörpern wird mit dem SERION ELISA
classic Toxoplasma gondii IgG (Bestell-Nr.: ESR110G) unter Anwendung des SERION ELISA
classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenzes (Bestell-Nr.: B110AVID) durchgeführt. Das
Aviditätsreagenz bewirkt bei niedrigaffinen IgG Antikörpern im Gegensatz zu hochaffinen die Auflösung
der Immunkomplexe, die sich im Laufe der Testdurchführung zwischen Toxoplasma gondii
Antikörpern und festphasenfixiertem Toxoplasma gondii Antigen bilden. Die parallele Testung mit
und ohne Einsatz des Aviditätsreagenzes ermöglicht Aussagen über die Avidität der vorliegenden
IgG Antikörper in den Proben.
4. INHALT UND ZUSAMMENSETZUNG DER TESTPACKUNG
Das Aviditätsreagenz liegt als Lyophilisat vor. Da sich das Aviditätsreagenz bei der Auflösung stark
abkühlt, ist es mindestens 30 Minuten vor dem Gebrauch zu rekonstituieren bzw. vorzuwärmen
(Brutschrank oder Wasserbad bei 37°C). Eine Testpackung enthält ein Fläschchen mit 2,0 ml Inhalt.
5. ZUSÄTZLICH BENÖTIGTE MATERIALIEN
- übliche Laborausrüstung
- Spektralphotometer für Mikrotiterplatten mit Filter der Wellenlänge 405 nm,
empfohlene Referenzwellenlänge im Bereich von 620 nm – 690 nm (z. B. 650 nm)
- Inkubator 37 °C
- Feuchte Kammer
- Aqua dest.
- Inkubationsplatte (Best.-Nr.: VT 110)
Anwendung wird zur Vermeidung von Randeffekten bei manueller Anwendung empfohlen
- Referenzserum für Toxoplasma gondii Aviditätstest (Best.-Nr.: BR110AVID)
Einsatz wird zur Richtigkeitsprüfung empfohlen
6. LAGERUNG UND HALTBARKEIT DER REAGENZIEN
Das Aviditätsreagenz enthält Harnstoff, der in wässriger Lösung instabil ist und sich unter
Freisetzung von Ammoniak und Kohlendioxid zersetzt. Als Lyophilisat ist das Aviditätsreagenz bis
zum angegebenen Verfallsdatum haltbar. Rekonstituiertes, flüssiges Reagenz sollte baldmöglichst
verbraucht werden (Haltbarkeit: maximal 4 Wochen bei 2 bis 8 °C, ein Jahr bei -20 °C).
Das Aviditätsreagenz enthält einen Indikatorfarbstoff als Pipettierhilfe.
7. DURCHFÜHRUNG DER AVIDITÄTSBESTIMMUNG
7.1 Allgemeine Hinweise
Das SERION Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz ist nur in Kombination mit dem SERION
ELISA classic Toxoplasma gondii IgG (Bestell-Nr.: ESR110G) anzuwenden. Bei Einsatz des
Reagenzes mit Testen anderer Hersteller kann keine Aussage über die Wertung der Ergebnisse
getroffen werden. Bitte beachten Sie auch die dem SERION ELISA classic beigelegte Gebrauchsanweisung.
Die Aviditätsbestimmung stellt an die Präzision der Testdurchführung besonders hohe Anforderungen.
Aus diesem Grund empfehlen wir bei manueller Abarbeitung die Verwendung einer Inkubationsplatte
(Bestellnummer: VT 110). Diese bewirkt eine deutliche Reduzierung von so genannten
Randeffekten durch eine schnelle Temperaturangleichung aller Kavitäten.
Die Doppelansätze sollten einheitlich auf innen- oder außenliegenden Kavitäten platziert werden.
7.2. Übersicht Testablauf
Probenvorbereitung
(Patientenproben, Verdünnung 1+100 und 1+1000)
Zugabe der verdünnten Proben, des gebrauchsfertigen Standardserums
sowie des Referenzserums als Doppelansatz (100µl)
INKUBATION 60 Min./37°C
in einer feuchten Kammer (manuell: auf Inkubationsplatte)
Entfernung der verdünnten Proben
Automat: absaugen manuell: nicht waschen
2 x waschen Platte gründlich ausschlagen
Alternative Befüllung der Doppelansätze mit jeweils
150µl Aviditätsreagenz (vorgewärmt) oder Waschlösung
INKUBATION 8 Min./37°C
in einer feuchten Kammer (manuell: auf Inkubationsplatte)
Waschen
Automat: 2 x waschen manuell: 4 x waschen
weiterer Ablauf der Testdurchführung wie beim
SERION ELISA classic Toxoplasma gondii IgG beschrieben
7.3. Testdurchführung
Die verdünnten Proben werden auf der Mikrotiterplatte des SERION ELISA classic Toxoplasma
gondii IgG im Doppelansatz aufgetragen. Die Aviditätstestung unterscheidet sich gegenüber der
üblichen Testdurchführung nur darin, dass nach der Probeninkubation (60 Minuten, 37°C) die Kavitäten
durch Ausschlagen entleert werden und danach parallel eine Kavität mit 150µl
Waschpuffer und die andere mit 150µl Aviditätsreagenz befüllt wird. Nach einer
Einwirkungszeit von 8 Minuten (+/- 1 Minute) bei 37°C (+/- 1°C) im Brutschrank
erfolgen die normalen Waschschritte mit Waschpuffer. Die weitere Testabarbeitung erfolgt nach
der Gebrauchsanleitung des SERION ELISA classic Toxoplasma gondii IgG.
Bei Verwendung eines Automaten ist der Waschprozess zu modifizieren (siehe Ablaufschema).
Da ein gründliches Ausschlagen der Platte nach der Seruminkubation nicht möglich ist,
wird nach dem Absaugen der Serumverdünnung zweimal gewaschen. Erst dann erfolgt die Inkubation
mit Aviditätsreagenz bzw. Waschpuffer. Im Anschluss werden die zwei restlichen Waschvorgänge
durchgeführt.
Da der IgG-Antikörpergehalt bei Patienten mit akuter Toxoplasma-Infektion oft sehr hohe Werte
erreicht, bei solchen mit länger zurückliegendem Infektionszeitpunkt dagegen ein eher niedriger
Antikörperspiegel zu finden ist, sollte eine Serumtestung im Toxoplasma IgG ELISA sowohl
bei einer 1+100 als auch 1+1000 (oder 1+5000) Verdünnung vorgenommen werden. Der
Antikörpergehalt der Probe liegt dann mit hoher Wahrscheinlichkeit im Messbereich des ELISA.

Zeitraubende Nachtestungen lassen sich so vermeiden. Die ermittelten Antikörperaktivitäten in IU/
ml bei der 1+1000 Verdünnung (oder 1+5000) sind mit dem Faktor 10 (bzw. 50) zu multiplizieren.
8. TESTAUSWERTUNG:
8.1. Berechnung der SERION Aviditätsindizes
Als Goldstandard bei der Aviditätsbestimmung gilt die Endpunkt-Titrationsmethode nach HEDMAN
(1), die jedoch auf Grund des hohen technischen Aufwands in der klinischen Routine kaum angewendet
werden kann. Die einfache Einpunktmethode, bei der ein Quotient (in Prozent) der OD-
Werte gebildet wird (Kavität mit Aviditätsreagenz/Kavität mit Waschpuffer), liefert auf Grund unterschiedlicher
Antikörpergehalte der Serumproben z. T. fehlerhafte Aviditätsindizes (5-8). Durch
die Konkurrenz zwischen hoch- und niedrigaffinen Antikörpern um die gleichen Bindungsstellen auf
der beschichteten Mikrotiterplatte, hat die jeweilige Konzentration der in den Proben vorliegenden
antigenspezifischen Antikörper einen deutlichen Einfluss auf die Werte der Aviditätsindizes.
Bei kommerziell verfügbaren Aviditätstesten wird häufig das Verfahren angewendet, den Aviditätsindex
als Quotienten der IgG Antikörpermengen auszudrücken (Titer mit Aviditätsreagenz/Titer mit
Waschpuffer). Der Einfluss der unterschiedlichen Antikörpergehalte wird dadurch kompensiert.
Die Aviditätsbestimmung mit dem SERION ELISA classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz
erfolgt auf der Basis der ermittelten OD-Werte, wobei eine Formel entwickelt wurde, welche
bei der Berechnung der SERION Aviditätsindizes den jeweiligen Gehalt an spezifischen Antikörpern
bei den einzelnen Proben berücksichtigt. Die Parameter der Umrechnungsformel werden aus den
Verdünnungsreihen mehrerer Seren für jede Charge des Aviditätsreagenzes individuell ermittelt.
Weiterhin erfolgt die Normierung des jeweiligen Testniveaus auf die Standardbedingungen (Zielwert
des Standardserums dividiert durch den aktuell gemessenen OD-Wert des Standardserums).
OD-Wert (Aviditätsreag.) x 100
SERION Aviditätsindex = x
OD-Zielwert (Std.)
x OD-Wert (WP) x (-X) + Y
OD-Wert (Waschpuffer) akt. OD-Wert (Std.)
Beim Vergleich des SERION Auswerteverfahrens gegenüber der Methode einer Quotientenbildung
der Antikörpermengen zeigte das SERION Verfahren bei Analyse der Präzision deutlich niedrigere
Variationskoeffizienten (9). Auch bei der Testung von Verdünnungsreihen wies das SERION Verfahren
meistens kleinere relative Standardabweichungen auf, d.h. die unterschiedlich hohen Antikörpergehalte
wurden besser kompensiert.
Zur Berechnung der SERION Aviditätsindizes mit der Einschätzung hoch- oder niedrigavid dient eine
Excel-basierte Auswertehilfe SERION avidity, die auf Wunsch zur Verfügung gestellt werden
kann. Dieses Auswerteprogramm nimmt die Umrechnung in SERION Aviditätsindizes vor. Bei
der Auswertehilfe müssen der aktuell ermittelte OD-Wert des Standardserums (ohne Behandlung
mit Aviditätsreagenz), der Zielwert des Standardserums, die Faktoren A, B, C und D sowie
X und Y (siehe Qualitätskontrollzertifikat des SERION ELISA classic Toxoplasma gondii IgG) für
jeden Testlauf eingetragen werden. Die Auswertehilfe liefert zudem Informationen wie „höher
verdünnen“ oder „Antikörpergehalt zu niedrig“, wenn die ermittelten Antikörperkonzentrationen
außerhalb des zulässigen Messbereichs liegen.
Der Substratleerwert (blank) muss vor der Auswertung von allen Messergeb-
nissen abgezogen werden, da die Ergebnisse vor allem von niedrigaviden Seren ansonsten
stark verfälscht würden. Anwendern, die die Messung mit einem Fotometer durchführen, welches
den Substratleerwert nicht selbständig von den Messwerten subtrahiert, steht ein spezielles
Excel-basiertes Rechenprogramm zur Verfügung („Toxoplasma blank“).
8.2. Testgültigkeitskriterien
- Der SERION Aviditätsindex des Standardserums muss bei der Aviditätsbestimmung innerhalb
der Gültigkeitsgrenzen liegen, die auf dem chargenspezifischen Qualitätskontrollzertifikat angegeben
sind. Das Standardserum gilt gleichzeitig als Richtigkeitskontrolle für hochavide Seren.
- Als Richtigkeitskontrolle für den niedrigaviden Messbereich ist ein niedrigavides Serum mitzu-
führen, dessen Aviditätsindex im erwarteten Bereich liegen muss. Es wird empfohlen, dazu das
Referenzserum für den Toxoplasma gondii Aviditätstest (Best.-Nr.: BR110AVID) einzusetzen. Der
Zielwert und der Gültigkeitsbereich für den SERION Aviditätsindex sind dem beiliegenden Zertifi-
kat dieses Referenzserums zu entnehmen.
- Von Proben mit Antikörperkonzentrationen kleiner als 20 IU/ml kann keine Aviditätsbestimmung
durchgeführt werden.
- Von Proben mit Antikörperkonzentrationen größer als 1000 IU/ml kann erst nach geeigneter
höherer Verdünnung eine Aviditätsbestimmung durchgeführt werden.
- In Abhängigkeit von der individuellen Leistungsfähigkeit des verwendeten Fotometers sollte bei
einem zu hohen OD-Wert einer Probe (z. B. größer als 2,000) ebenfalls eine höhere Verdünnung
gewählt werden.
Des weiteren gelten auch die in der Gebrauchsanleitung für den SERION ELISA classic Toxoplasma
gondii IgG aufgezeichneten Testgültigkeitskriterien. Es ist zu beachten, dass bei den OD-Werten
des Standards nur die mit Waschpuffer behandelten Kavitäten gewertet werden dürfen.
8.3. Interpretation der Ergebnisse
Das Aviditätsreagenz wurde so eingestellt, dass die Grenze zwischen hoch- und niedrigaviden
Toxoplasma gondii-IgG-Seren bei einem Aviditätsindex von 50 % liegt. Daraus folgt:
• Ein Aviditätsindex von über 50 % weist auf einen länger zurückliegenden
Infektionszeitpunkt hin (mehr als 3 bis 4 Monate).
Niedrige Aviditätsindizes erhärten den Verdacht auf eine kürzer zurückliegende Primärinfektion.
Sehr niedrige Aviditätsindizes (ca. 10 - 30 %) weisen zwar auf ein unmittelbares Infektionsgeschehen
hin, ein direkter linearer Zusammenhang zwischen der Höhe des Aviditätsindexes und dem
Infektionszeitpunkt kann jedoch nicht hergestellt werden, da die Aviditätsreifung großen individuellen
Schwankungen unterworfen ist. Unter einer größeren Anzahl von Blutspendern mit IgG
Antikörpern gegen Toxoplasma gondii finden sich auf Grund von verzögerter Immunreifung einzelne
niedrigavide Seren (siehe auch Punkt 9. Leistungsmerkmale). Niedrigavide IgG-Antikörper sind daher
nicht in jedem Fall ein Beweis dafür, dass eine aktuell ablaufende Primärinfektion vorliegt.
• Ein Aviditätsindex unter 45 % lässt eine kurz zurückliegende Infektion vermuten
(weniger als 3 bis 4 Monate).
• Der Bereich von 45 bis 50 % wird als Grenzbereich interpretiert , wobei die
Untersuchung in diesem Falle wiederholt werden sollte. Bei wiederholtem Ergebnis in diesem
Bereich kann keine Aussage über den Infektionszeitpunkt getroffen werden.
Bei hoher Konzentration niedrigavider Antikörper kann vereinzelt beobachtet werden, dass diese
nicht quantitativ an der Mikrotestplatte binden. Erkennbar ist dies daran, dass die Antikörperquantifizierung
keine Verdünnungslinearität aufweist, d.h. unter Berücksichtigung des Verdünnungsfaktors
werden mit zunehmender Verdünnung höhere Antikörperaktivitäten gemessen. Gleichzeitig
ergeben sich unterschiedliche Aviditätsindizes für die individuellen Verdünnungsstufen. Die korrekte
Bewertung der Aviditätsindizes muss bei solchen Proben im Bereich höherer Verdünnungsstufen
erfolgen, d.h. im unteren Teil des Messbereichs bei niedrigen Antikörperaktivitäten.
Das Ergebnis der Aviditätsprüfung muss in jedem Fall unter Beachtung der übrigen
Resultate der Toxoplasma gondii-Diagnostik sowie des klinischen Hintergrunds
des Patienten gewertet werden.
9. LEISTUNGSMERKMALE
Das SERION ELISA classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz wurde in einer internen
Studie hinsichtlich der Leistungsmerkmale geprüft.
9.1 Präzision
Die intraserielle Präzision wurde mit unterschiedlich aviden Seren im Mehrfachansatz (n=10)
innerhalb einer antigenbeschichteten Platte ermittelt. Für die Bestimmung der interseriellen
Präzision wurden Serumproben mit unterschiedlicher Avidität in 10 unabhängig voneinander
durchgeführten Ansätzen geprüft.
Serum
Serum 1: niedrigavid
Serum 2: mittelavid
Serum 3: hochavid
Serum 4: hochavid
Für die Ermittlung der Präzision im Messbereich von 20 bis 1000 IU/ml wurde ein hochtitriges
Toxoplasma gondii IgG Serum stufenweise verdünnt und die einzelnen Verdünnungsstufen im Mehrfachansatz
(n=10) analysiert.
Serum-
verdünnung
1:500
1:1000
1.4000
1:8000
1:16000
Mittelwert
Avid.-Index (%)
11
32
70
83
Mittelwert
der AK-Titer
(IU/ml)
759
375
84
41
20
Intraassay Interassay
Es wurden Verdünnungsreihen von weiteren 11 Seren getestet. Damit konnte bestätigt werden,
dass eine Aviditätsbestimmung im Messbereich von 20 bis 1000 IU/ml zuverlässige Resultate ergibt.
VK
(%)
11,4
9,1
11,3
5,1
Mittelwert der
Aviditätsindizes
(%)
59
63
70
72
72
Mittelwert
Avid.-Index (%)
14
38
67
82
VK
(%)
9,7
13,9
8,8
3,9
Variationskoeffizient
( %)
7,3
8,6
12,2
4,0
13,2
9.2 Prüfung von 148 positiven Blutspendeseren
Die mittlere SERION Avidität dieses Panels wurde mit 72,4 % bestimmt. Es fanden sich unter den
148 Blutspendeseren zwei Seren mit niedrigem und ein Serum mit grenzwertigem Aviditätsindex.
Diese drei Seren von unauffälligen Blutspendern mit mittel- bis niedrigaviden Toxoplasma gondii-
IgG-Antikörpern, bei denen keine Toxoplasma gondii-IgM-Antikörper zu finden waren, weisen darauf
hin, dass bei einzelnen Patienten auf Grund von individuellen Besonderheiten die Immunreifung
verzögert bzw. verhindert sein kann.
9.3 Prüfung eines Panels mit Seren definierter Avidität
An Hand eines Panels, bestehend aus 34 Seren mit bekannter Toxoplasma IgG Avidität konnte
gezeigt werden, dass der SERION Toxoplasma Aviditätstest mit hoher Zuverlässigkeit zwischen
hoch- und niedrigaviden Seren unterscheiden kann. Dieses Panel enthielt 19 Ringversuchsseren,
die in den letzten Jahren mit der Vorgabe „hochavid“ oder „niedrigavid“ vom Instand e.V. ausgegeben
wurden. Zu den übrigen Seren lagen Daten zur Avidität bzw. zum klinischen Hintergrund der
Patienten vor. Die Ergebnisse der Austestung im SERION Toxoplasma Aviditätstest ergab bei allen
Seren eine sehr gute Übereinstimmung mit den Vorgaben.
10. SICHERHEITSMASSNAHMEN
10.1 Warnhinweise und Vorsichtsmaßnahmen
Das SERION ELISA classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz ist ein In-vitro-Diagnostikum
und nur für die Anwendung durch Fachpersonal vorgesehen, welches die Arbeitstechniken
einwandfrei beherrscht. Bitte beachten Sie auch die Gebrauchsanweisung, die dem SERION ELISA
classic Toxoplasma gondii IgG beigelegt ist und die dort aufgeführten Warnhinweise.
10.2 Entsorgung
Das SERION ELISA classic Toxoplasma gondii Aviditätsreagenz ist kein Gefahrstoff
und kann deshalb ohne besondere Vorkehrungen entsprechend den gesetzlichen Bestimmungen
entsorgt werden.
11. LITERATUR
1. Hedman K, Lappalainen M, Seppälä I, Mäkelä O. “Recent primary toxoplasma infection indicated
by a low avidity of specific IgG” The Journal of infectious diseases 1989; 159: 736-739.
2. Jenum P A, Stray-Pedersen B, Gundersen A. “Improved diagnosis of primary toxoplasma gondii
infection in early pregnancy by determination of antitoxoplasma immunoglobulin G avidity” Journal
of clinical microbiology, 1997; 35: 1972-1977.
3. Suter B J, Blatter S, Bittar M, Viollier E H. „Toxoplasmose-IgG-Avidität: Welchen Stellenwert hat
sie in der Schwangerschaft?“ Schweizerische medizinische Wochenschrift 1999; 129: 1938-41.
4. Jenum P A, Stray-Pedersen B, Melby K K, Kapperud G, Whitelaw A, Eskild A, Eng J. „Incidence
of toxoplasma gondii infection in 35.940 pregnant women in Norway and pregnancy outcome for
infected women” Journal of clinical microbiology, 1998; 36: 2900-2906.
5. Kruppa C, Blatz R. „Erfahrungen mit Aviditätsbestimmungen bei der Toxoplasmosediagnostik
während der Schwangerschaft“ Mikrobiologe 1999; 9: 41-51.
6. Korhonen M H, Brunstein J, Haario H, Katnikov A, Rescaldani R, Hedman K. „A new method with
general diagnostic utility for the calculation of immunoglobulin G avidity“ Clinical and diagnostic
laboratory immunology 1999; 6: 725-728.
7. Prince H, Wilson M, “Simplified assay for measuring toxoplasma gondii immunoglobulin G avidity”
Clinical and diagnostic laboratory immunology 2001; 8: 904-908.
8. Lappalainen M, Hedman K, „Serodiagnosis of toxoplasmosis. The impact of measurement of IgG
avidity” Annali dell‘Istituto superiore di sanita 2004; 40: 81-88.
9.Koppatz G, Hermann G. SERION ELISA classic Avidity Tests: Presentation of the novel SERION
evaluation method. Poster, presented at the 18th Annual Meeting of the Society of Virology, 2008,
Heidelberg.
Hersteller: Institut Virion\Serion GmbH V6.12/01-1
Friedrich-Bergius-Ring 19
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