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4. Material und Methoden<br />

I. 4. Material und Methoden<br />

Die angewendeten molekularbiologischen Methoden, Lösungen und sonstige La-<br />

borbedarfsmittel richteten sich nach den Herstellerangaben der Produkte, bzw. nach<br />

Sambrook et. al. (Sambrook und Russell, 2001).<br />

Die Experimente wurden mit Tieren des San Bernadino Stammes durchgeführt<br />

(M. Klingler, persönliche Mitteilung).<br />

4.1. Klonierung<br />

Die Tribolium-Orthologe zu nanos, pumilio und brain-tumor wurden über BLAST-<br />

Homologiesuchen (http://beetlebase.org/blast/blast.html, http://www.hgsc.bcm.tmc.<br />

edu/blast.hgsc oder http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) mit den Drosophila Prote-<br />

insequenzen identifiziert. Fragmente der Gene wurden mit Hilfe genspezifischer<br />

Primer aus cDNA amplifiziert und kloniert.<br />

RNA aus unterschiedlichen embryonalen Stadien wurde mit Hilfe von TRIzol Re-<br />

agenz (Invitrogen) nach Herstellerangaben isoliert, die Isolate wurden vereinigt und<br />

davon mit der Superscript II Reversen Transkriptase (Invitrogen) ebenfalls nach<br />

Herstellerangabe cDNA hergestellt. Ein !l der cDNA wurde für PCR eingesetzt.<br />

Tab. 3: Primer und PCR-Bedingungen<br />

Gen/Primer<br />

nanos<br />

Annealingtemperatur<br />

fw 5’-CCCCAAAATGTTACGACT-3’<br />

bw 5’-CATGTTATATACAATGTAATTTGG-3’ 50 °C 810 bp<br />

pumilio (kloniert während der Diplomarbeit)<br />

fw 5’-CAATCACATCGTGGAG-3’<br />

bw 5’-CTCAACGAGTTAAGATGAG-3’ 50 °C 887 bp<br />

brain-tumor<br />

fw 5’-GCAAGTTCGGCGAGTTTGG-3’<br />

bw 5’-GAAACATTGGGCGTGCTTC-3’ 52 °C 713 bp<br />

Fragmentlänge<br />

PCR-Produkte wurden mit einer T4-DNA-Polymerase (New England Biolabs)<br />

vervollständigt, mit Polynukleotidkinase (New England Biolabs) phosphoryliert,<br />

mittels präparativer Agarosegelektrophorese (MinElute Gelextraction Kit, Quiagen)<br />

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