Antiinfektiva-Leitfaden

Universitätsklinikum Halle (Saale) 

Antiinfektiva-Leitfaden 

Empfehlungen für die empirische 

antiinfektive Therapie und Prophylaxe 

Version 2012 

1. Auflage Januar 2012 

Arbeitsgruppe Antiinfektiva des Universitätsklinikums Halle (Saale)

Wichtige Telefonnummern, FAX-Anschlüsse 

Abteilung Telefon Fax 

Virologie 

Probenannahme 

Befundauskunft 

Rufbereitschaft (außerhalb der Dienstzeiten) 

Bakteriologie 

Probenannahme 



Molekularbiologie 

Probenannahme 



Apotheke 

Arzneimittelausgabe 

Arzneimittelinformation/Sonderbeschaffung 


Infektiologische Konsile 

OA Dr. C. Lübbert (KIM I) - Klinische Infektiologie, 

Gastroenterologie/Hepatologie 

Prof. Dr. G. Keyßer (KIM II) - Rheumatologie 

OA Dr. H.-H. Wolf (KIM IV) - Hämatologie/Onkologie 

Konsildienst für HIV-Patienten 

Dr. D. Lange (Dermatologie) 

OA Dr. B. Kreft (Dermatologie) 

OA Dr. T. Kegel (KIM IV) 

T. Behlendorf (KIM IV) 

OA Dr. C. Lübbert (KIM I) 

Hygiene 

Institut für Hygiene 

Zentralsterilisation, Sr. Judith Weilepp 

1610 

1610 

5566 

1481 

1487 

5555 

9822991 

9822991 

5566 

2277 

2977 oder 2268 

91 

2665 

1996 

2924 

2685 

7438 

2924 

2924 oder 2609 

2665 

1094 

3144 

1476 

1476 

9822997 

2279 

2279 

2253 

4934 

2950 

2697 

7663 

2950 

2950 

2253 

1093

Universitätsklinikum Halle (Saale) 

Antiinfektiva-Leitfaden 

Empfehlungen für die empirische 

antiinfektive Therapie und Prophylaxe 

1. Auflage Januar 2012 

Arbeitsgruppe Antiinfektiva des Universitätsklinikums Halle (Saale)

Impressum 

Erarbeitet von der Arbeitsgruppe „Anwendung von Antiinfektiva am UKH“: 

Dr. Christoph Lübbert, Klinik für Innere Medizin I, Arbeitsbereich Infektiologie 

Stephanie Stareprawo, Fachapothekerin, Universitätsapotheke 

Dr. Stefan Moritz, Klinik für Anästhesiologie und operative Intensivmedizin 

Dr. Gabriele Heeß-Erler, Qualitätsmanagement 

Christel Fiebig, Hygienefachschwester 

Die Mitglieder der Arbeitsgruppe danken folgenden am UKH tätigen Kolleginnen und Kollegen, die bei 

der Erstellung dieses Leitfadens aktiv mitgewirkt haben: 

Dr. Toralf Bernig, Kinderheilkunde 

Urantschimeg Dagwadordsch, Mikrobiologie 

PD Dr. Henning Ebelt, Kardiologie/Internistische Intensivmedizin 

PD Dr. Alexander W. Eckert, Mund-, Kiefer- und Plastische Gesichtschirurgie 

Dr. Ulrike Eschrich, Kinderkardiologie 

Dr. Alexander Glien, HNO-Heilkunde 

Dr. Regina Große, Gynäkologie 

Dr. Roland Haase, Kinderheilkunde 

Dr. Madelaine Hildebrand, Orthopädie 

Dr. Endres John, Allgemein-, Viszeral- und Gefäßchirurgie 

Dr. Ina Karbe, Gynäkologie 

Prof. Dr. Gernot Keyßer, Rheumatologie 

Dr. Burkhard Kreft, Dermatologie 

Dr. Katharina Krohe, Herz- und Thoraxchirurgie 

Dr. Silke Markau, Nephrologie und Dialyse 

Jens Mathusalem, Unfallchirurgie 

Dr. Nick Merkel, Kinderheilkunde 

Dr. Lutz Müller, Hämatologie/Onkologie 

Dr. Tobias Müller, Neurologie 

PD Dr. Albrecht Oehme, Virologie 

Dr. Julian Prell, Neurochirurgie 

Dr. Bernd Schmidt, Pneumologie 

Dr. Constanze Schumann, Geburtshilfe 

Dr. Thomas Steinke, Anästhesiologie und operative Intensivmedizin 

Dr. Thomas Weber, Hämatologie/Onkologie 

Dr. Karl Weigand, Urologie 

Dr. Dorothea Wilhelms, Mikrobiologie 

Prof. Dr. Johannes Wohlrab, Dermatologie 

Dr. Bettina Wollschläger, Pneumologie 

Allgemeiner Hinweis: 

Die Angaben (Dosierungen, Handelsnamen, Medikamente) im Antiinfektiva-Leitfaden wurden sorgfältig 

recherchiert und entsprechen dem aktuellen Wissensstand. Irrtümer, Schreibfehler etc. sind jedoch nicht 

auszuschließen. Die Berücksichtigung des Leitfadens entbindet den Anwender nicht von der Verpflichtung, die 

Therapieempfehlungen aktueller Leitlinien sowie Fachinformationen (Indikationen, Kontraindikationen, 

Dosisempfehlungen) zu lesen, zu beachten und anzuwenden. 

Alle Rechte vorbehalten. Die vollständige oder teilweise Vervielfältigung (durch Fotokopie oder ein anderes 

Verfahren) und/oder Verbreitung des Inhalts des Antiinfektiva-Leitfadens ist ohne schriftliche Genehmigung des 

Rechteinhabers unzulässig.

Vorwort 

Nie hat die antiinfektive Therapie Ärzte vor größere Probleme gestellt als in der heutigen Zeit, die geprägt ist 

von zunehmenden Antibiotikaresistenzen und damit einhergehenden Wirkverlusten wichtiger antimikrobieller 

Substanzen. Für die erfolgreiche Therapie von Infektionserkrankungen sind sorgfältig zu erhebende klinische 

Befunde in gleicher Weise maßgebend wie mikrobiologische Untersuchungsergebnisse und das Wissen über 

die pharmakologischen Eigenschaften der verwendeten Arzneimittel. Auch Kenntnisse über die Therapiekosten 

sind unter den heutigen Rahmenbedingungen unabdingbar. Der Einsatz antimikrobieller Substanzen erfordert 

aus diesen Gründen fachübergreifende Sachkompetenz. Inadäquate Entscheidungen führen dazu, dass 

Therapieziele nicht erreicht werden können. 

Aus diesen Gründen beschloss der Vorstand des Universitätsklinikums Halle (Saale) Anfang 2011 die 

Gründung einer Projektgruppe mit dem Ziel, für das gesamte Universitätsklinikum gültige Empfehlungen für die 

empirische antiinfektive Therapie zu erstellen. Um eine möglichst hohe Bandbreite an Therapievorschlägen zu 

erhalten und um den realen Gegebenheiten in den einzelnen Kliniken gerecht zu werden, waren Vertreter der 

verschiedenen Kliniken und Fachgebiete involviert. Die Koordinierung und Leitung des Projekts oblag dabei 

einer von Herrn Oberarzt Dr. Lübbert aus der Klinik für Innere Medizin I geleiteten Arbeitsgruppe, deren 

Mitglieder Sie umseitig genannt finden. 

Die nun vorliegende 1. Ausgabe soll insbesondere den noch in Ausbildung befindlichen Ärzten am 

Universitätsklinikum Halle bei der Auswahl geeigneter Antiinfektiva und ihrer richtigen Anwendung als 

Kitteltaschen-Ratgeber dienen. Die darin enthaltenen Therapieempfehlungen berücksichtigen die in der 

Literatur und den Leitlinien der Fachgesellschaften niedergelegten aktuellen Erkenntnisse und geben konkrete 

Hinweise zur Wahl der antimikrobiellen Substanzen, deren Dosierung, Applikationsweg, Therapiedauer und zu 

berücksichtigender Erregerätiologien sowie notwendiger infektionsmedizinische Diagnostik. Die 

Therapieempfehlungen wurden indikationsbezogen erarbeitet. Die Auswahl der einzelnen Substanzen erfolgte 

entsprechend ihrer zugelassenen Indikation, ihrer Effizienz bezüglich der Wirksamkeit unter besonderer 

Berücksichtigung der lokalen Resistenzlage, ihres Status in der hauseigenen Arzneimittelliste und berücksichtigt 

auch zu erwartende Therapiekosten. 

Die konsequente Anwendung der hier gegebenen Empfehlungen soll einen entscheidenden Beitrag dazu 

leisten, antiinfektive Therapiestrategien zu optimieren, Resistenzbildung zu verhindern, Kosten zu sparen und 

Nebenwirkungen zu minimieren und dient somit nicht zuletzt der Verbesserung der Patientensicherheit. 

Das Universitätsklinikum Ulm hat uns großzügigerweise die Einbeziehung seiner bereits in 10. Auflage 

vorhandenen hausinternen Antiinfektiva-Leitlinien gestattet. Hierfür möchten wir uns ausdrücklich bedanken, 

wäre doch sonst die Fertigstellung des vorliegenden Leitfadens innerhalb von 6 Monaten nicht möglich 

gewesen. 

Halle, im November 2011 

PD Dr. T. Klöss Prof. Dr. M. Gekle Prof. Dr. P. Presek 

Ärztlicher Direktor Dekan der Med. Fakultät Vorsitzender der 

Vorsitzender des der MLU Arzneimittelkommission 

Klinikumsvorstandes 

Der Antiinfektiva-Leitfaden wurde im Dezember 2011 vom Klinikumsvorstand verabschiedet und erhält somit 

den Charakter einer Dienstanweisung. Abweichungen sind nur aus strenger medizinischer Indikation 

zugelassen und die Gründe sind schriftlich in der Patientenakte zu dokumentieren. Bei Unklarheiten sollte 

unverzüglich ein infektiologisches Konsil eingeholt werden.

Allgemeine Hinweise für die Anwendung von Antiinfektiva 

1. Antiinfektiva sind außerordentlich wertvolle, unter Umstände lebensrettende und oftmals kostspielige Substanzen. Sie werden in der Praxis leider zu häufig 

unkritisch, mit falscher Indikation, in Unkenntnis der Erreger, ungenügend dosiert, zu „breit“ und in unnötigen oder unsinnigen Kombinationen eingesetzt oder zu 

lange verabreicht. Viele Ärzte sind in der rationalen Anwendung von Antiinfektiva unerfahren oder unzureichend ausgebildet. Hier soll der vorliegende Leitfaden 

entsprechende Unterstützung geben. 

2. Die Indikation zur Anwendung von Antiinfektiva ist so streng wie möglich zustellen. Stets ist eine gezielte Behandlung bei vorhandenem Erregernachweis 

anzustreben. Erfolgt die Gabe von Antiinfektiva empirisch, sollte eine „breite Abdeckung“ stets vermieden werden, vielmehr gilt es eine kalkulierte Behandlung 

unter Berücksichtung des zu erwartenden Keimspektrums und ggf. vorhandener Resistenzen einzuleiten. 

3. Antiinfektiva sind keine Antipyretika oder Mittel zur unreflektierten Absenkung eines erhöhten CRP-Wertes. Hinreichende Evidenz für das Vorliegen einer 

Infektion durch klinische Befunde, Laborwerte, mikrobiologische oder infektionsserologische Befunde müssen die antiinfektive Behandlung rechtfertigen. 

4. Insbesondere bei intensivmedizinisch betreuten Patienten hat es sich bewährt, die als sog. Tarragona-Strategie (Scandiumenge A et al. Intensive Care Med 

2003; 29: 876-83) propagierten Grundprinzipien der antiinfektiven Therapie schwerer Infektionen zu berücksichtigen: „Look at your patient“ – „Hit hard (and 

early)“ - „Listen to your hospital“ - „Get to the point“ - „Focus, focus, focus“. 

5. Vor Beginn jeder antiinfektiven Therapie muss eine dem Fokus entsprechende mikrobiologische (ggf. auch virologische) Diagnostik veranlasst werden. 

Bei Sepsis oder bakteriämischen Infektionen sind unbedingt mehrfach Blutkulturen abzunehmen. 

6. Die aktuelle Resistenzsituation, die dem jährlich erscheinenden Erreger- und Resistenzbericht des Instituts für Medizinische Mikrobiologie zu entnehmen ist, 

muss bei der Auswahl von Antiinfektiva berücksichtigt werden. 

7. Hinsichtlich der Risikostratifizierung hat sich eine grundsätzliche Unterscheidung zwischen ambulant und nosokomial bzw. „nosokommunal“ (oder healthcareassociated, 

also Pflegeheime, Dialyseeinrichtungen etc.) erworbenen Infektionen bewährt. 

8. Eine sorgfältige Anamneseerhebung bezgl. der antiinfektiven Vorbehandlung ist zwingend erforderlich, insbesondere mit Augenmerk auf Fluorochinolone, 

Cephalosporine, Vancomycin oder Azol-Antimykotika vor dem Hintergrund von Selektionspotential bzw. problematischem MHK-Anstieg („sog. MIC-Creep“). 

Beispiel: reduzierte Fluconazol-Empfindlichkeit von Candida spp. nach Fluconazol-Vorexposition. 

9. Die in diesem Leitfaden angegebenen Dosierungen sollen eingehalten werden, auch wenn vom Hersteller oder Fachgesellschaften andere Dosisschemata 

empfohlen werden. 

10. Hinsichtlich der notwendigen Therapiedauer gibt es konkrete Empfehlungen, die in Spalte 5 der nachfolgenden Tabellen angegeben sind. 

11. Bei einer länger dauernden Anwendung von Aminoglykosiden bzw. von Vancomycin (>1 Woche) müssen die Medikamentenspiegel regelmäßig kontrolliert 

werden (siehe Fußnoten im Leitfaden bzw. Angaben der Universitätsapotheke im Intranet). 

12. Bei nachgewiesener/dokumentierter Penicillin-/Beta-Laktam-Allergie sollte aufgrund der Gefahr anaphylaktischer Reaktionen eine antimikrobielle Substanz 

aus einer anderen Substanzgruppe (z.B. Fluorochinolone) gewählt werden (siehe dazu Kapitel 20). 

13. Eine ausbleibende Entfieberung 2 bis 3 Tage nach Therapiebeginn muss Anlass sein, eine eingeleitete antiinfektive Behandlung zu überdenken. Bei 

Unklarheiten sollte eine Vorstellung im Rahmen eines infektiologischen Konsils erfolgen.

14. Stets sind individuelle Besonderheiten beim Patienten zu berücksichtigen, z.B. Störungen der Leber- oder Nierenfunktion oder Schwangerschaft. 

15. Fast immer ist eine Antibiotika-Monotherapie ausreichend. Sofern eine hinreichende Evidenz für Kombinationstherapien besteht sind diese entsprechend 

angegeben. Eine kalkuliert begonnene empirische Antibiotikatherapie ist nach Eintreffen des Erregernachweises und der Resistenzbestimmung stets auf 

wirksamere und/oder preiswertere Substanzen umzusetzen, möglichst als Monotherapie. 

16. Die Infusionsdauer ist üblicherweise eine Kurzinfusion und sollte 30 Minuten betragen, bei abweichenden Angaben z.B. bei Carbapenemen oder Vancomycin 

ist diese entsprechend dem vorliegendem Leitfaden durchzuführen. 

17. Die gleichzeitige Anwendung mehrerer nephro- bzw. ototoxischer Substanzen muss strikt vermieden werden. 

18. Unbedingt sollte im Behandlungsverlauf stets auf die frühzeitige Umstellung von i.v.-Gabe auf per os Applikation geachtet werden (sogenannte Sequenz- oder 

Sequentialtherapie). 

19. Die antiinfektive Therapie erfolgt so lange wie nötig und so kurz wie möglich. In der Regel können Antibiotika 3 Tage nach Entfieberung abgesetzt werden 

(Ausnahmen: z.B. Tonsillitis, Endokarditis, Osteomyelitis). Falls der Patient 2 bis 3 Tage nach Beginn der antibiotischen Therapie nicht entfiebert und kein 

Erregernachweis gelingt, sind alle Ursachen eines Therapieversagens (siehe unten) abzuwägen. Gegebenenfalls sollte eine wirkungslose Antiinfektivatherapie 

abgesetzt werden und - falls der Zustand des Patienten dies erlaubt - nach mehrtägiger Antibiotikapause eine erneute Diagnostik durchgeführt werden. 

Hinweise zu Therapieversagen unter Antibiotikatherapie 

Wesentliche Gründe für einen ausbleibenden Behandlungserfolg von Infektionskrankheiten können sein: 

- falsches Antibiotikum (primäre oder erworbene Resistenz des Erregers) 

- falsche Dosierung mit unzureichender Konzentration des Arzneimittels am Ort der Infektion (Unterdosierung bei Adipositas, problematische Pharmakokinetik, 

abszedierende Infektionen, ausgedehnte Nekrosen, Fremdkörperinfektionen) 

- Antibiotikum trotz nachgewiesener in-vitro-Empfindlichkeit in vivo unwirksam 

- erworbene Resistenzentwicklung unter laufender Therapie (z.B. gegen Cephalosporine der dritten Generation bei Enterobacter cloacae) 

- schwere Immmundysregulation 

- unzureichender Erregernachweis wegen schwieriger Anzucht (z.B. Mycobacterium tuberculosis, Chlamydien, Brucellen) 

- Vorliegen einer Virus- oder Pilzinfektion, ggf. in Kombination mit einer bakteriellen Infektion 

- keine mikrobiologische Ursache eines infektionsähnlichen Krankheitsbildes (SIRS, Drug Fever, sonstige Ursachen eines Fiebers - siehe Kapitel 13). 

- unzureichende supportive oder organprotektive Therapie (Beatmung, Flüssigkeitssubstitution, Ausgleich von Elektrolytstörungen, Kreislaufstabilisierung etc.)

Abschnitt I - Therapie 

1 Abdominalinfektionen 

1.1 Primäre (spontan bakterielle) Peritonitis, bei Leberzirrhose 

Diagnostik: Aszites-Punktion mit Zellzahlbestimmung (Cut-off: >400 Leuko/µl), Beimpfung von Blutkulturflaschen mit jeweils 5-10 ml Aszites (aerob, 

anaerob, Kennzeichnung als Aszites-Kultur), zusätzlich Nativmaterial für Direktpräparat und Kultur 

Bei persistierendem Aszites gastroenterologisches Konsil anfordern! 

Häufige Erreger Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 

E. coli, 

Klebsiella spp., 

(Enterokokken) 

1. Wahl Ceftriaxon 1 1 x 2 g Kurzinfusion 5-7 d 

Alternative Piperacillin/Tazobactam 2 3 x 4,5 g Kurzinfusion 5-7 d 

1.2 Sekundäre Peritonitis 

Diagnostik: mindestens 3 intraoperative Abstriche an Mikrobiologie, Blutkulturen (aerob, anaerob) 


Enterobacteriaceae 

(Klebsiella, Proteus, 

Enterobacter, Serratia), 

Anaerobier, 

Enterokokken 

lokal begrenzt Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 1-2 d 

diffus 

Piperacillin/Tazobactam 

evtl. plus 

Gentamicin 

3 x 4,5 g Kurzinfusion 

1 x 5 mg/kg KG 

Risikopatienten 3 Imipenem/Cilastatin 3 x 1 g Infusion über 2 h 7-10 d 

1 

Cave: Enterokokkenlücke bei Cephalosporinen. Bei Verdacht auf Enterokokken-Beteiligung (z.B. bei schwerkranken Patienten) Substanzauswahl verändern! 

2 

Mit Wirksamkeit gegen Enterococcus faecalis und Anaerobier 

3 

Multiresistente Erreger (z.B. ESBL) wahrscheinlich, antibiotische Vortherapie, drohendes oder manifestes Organversagen, Sepsis, ITS-Voraufenthalt

1.3 Tertiäre Peritonitis 

Diagnostik: mindestens 3 intraoperative Abstriche an Mikrobiologie, Kontrolle der Durchführung durch OP-Personal 



(Klebsiella, Proteus, 

Enterobacter, Serratia), 

Anaerobier, 

Enterokokken 

1. Wahl 

weitere Eskalation 

abhängig vom 

Erregernachweis 

oder empirisch bei 

Hochrisikopatienten 1 

Imipenem/Cilastatin 

evtl. plus 

Gentamicin 

plus 

Tigecyclin 

plus 

Caspofungin 2 

3 x 1 g Infusion über 2 h 

5 mg/kg KG 

1.Tag 1 x 100 mg i.v. ab 2. Tag 2 x 50 mg 

1.Tag 1 x 70 mg i.v. 

ab 2. Tag 70 kg 1 x 70 mg i.v. 

1.4 CAPD-Peritonitis 

Diagnostik: vor Therapiebeginn Bestimmung der Zellzahl im Dialysat (Cut-off: >100 Leuko/µl), Anlage einer Dialysat-Kultur und eines Grampräparates 

10-14 d 


(80% GRAMPOSITIVE) 

Staphylokokken, 

Streptokokken, 

Enterokokken, 

Enterobacteriaceae, 

Pseudomonas 

aeruginosa, 

Acinetobacter spp. 

ambulante/stationäre 

Behandlung 3 

ohne Komplikationen 

stationäre 

Behandlung mit 

schwerer 

Allgemeinreaktion 5 

Cefotaxim 4 

Cefotaxim 4 

plus 

Ciprofloxacin 

alternativ 

Vancomycin 

plus 

Gentamicin 

1 g i.p.in den ersten Beutel 

dann 0,5 g in jeden weiteren Beutel 

(4 Beutelwechsel/d) 

1 g i.p.in den ersten Beutel 

dann 0,5 g in jeden weiteren Beutel 

(4 Beutelwechsel/d) 

2 x 500 mg p.o. 

Startdosis 1 g (Infusion über 1 h) 

Startdosis 120 mg Kurzinfusion 

1 

Definition Hochrisikopatienten: prolongierter ITS-Aufenthalt, Immundysregulation, Z.n. mehrfacher operativer Intervention, gesicherte multifokale Pilzkolonisation 

2 

Alternativ auch Anidulafungin (Dosierung 1.Tag 1 x 200 mg i.v., ab 2. Tag 1 x 100 mg i.v.) 

3 

Milde Infektionszeichen: Leukozyten

Candida spp. 1 

stabile Patienten Fluconazol 

instabile Patienten 

oder bei vorheriger 

Azol-Gabe 

1.5 Akute Cholezystitis/Cholangitis 

Caspofungin 

1.Tag 1 x 400 mg p.o. 

ab 2. Tag 1 x 200 mg p.o. 

1.Tag 1 x 70 mg i.v. 

ab 2. Tag 70 kg 1 x 70 mg i.v 

Wichtigstes Ziel: Obstruktion der Gallenwege ausschließen und ggf. beseitigen (interventionelle Entlastung) 

Diagnostik: Blutkulturen (aerob/anaerob), bei ERCP Galleaspirat für Mikrobiologie gewinnen 

14-21 d 



Anaerobier, 

Enterokokken 

1. Wahl Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 2,2 g Kurzinfusion 7 d 

Eskalation Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 7 d 

1.6 Helicobacter pylori-assoziierte Gastritis 

Indikationen zur H. pylori-Eradikation: peptisches Ulkus, blutendes Ulkus, MALT-Lymphom, atrophische Gastritis, nach Resektion eines 

Magenkarzinoms, Verwandte ersten Grades von Magenkarzinom-Patienten, vor Dauertherapie mit NSAR 


H. pylori 

Primärtherapie 2 

Sequentielle 

Zweitlinien- 

Therapie 2 

Amoxicillin 

plus 

Clarithromycin 

plus 

Pantoprazol 

Amoxicillin 

plus 

Levofloxacin 

plus 

Pantoprazol 

1 Primäre Katheterentfernung empfohlen 

2 Bei Magen- oder Duodenalulzera wird die Gabe von PPI für 2-6 Wochen empfohlen 

2 x 1 g p.o 

2 x 500 mg p.o. 

2 x 40 mg p.o. 

2 x 1 g p.o. 

2 x 500 mg p.o. 

2 x 40 mg p.o. 

7 d 

10 d

1.7 Divertikulitis 

Bildgebende Diagnostik: spezialisierter Ultraschall der Darmwand, ggf. CT Abdomen 

Gastroenterologisches Konsil anfordern! Endoskopische Untersuchung erst 4-6 Wochen nach Abklingen der akuten Entzündung. 



Anaerobier, 

Enterokokken 

1.8 Akute Pankreatitis 

Primärtherapie Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 2,2 g Kurzinfusion 

Eskalation Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 

Keine Antibiotikagabe bei leichtem Verlauf, da meist abakteriell 

1.9 Schwere/ sekundäre/ nekrotisierende Pankreatitis 

Eine sichere Indikation für eine Antibiotika-Therapie besteht bei nachgewiesenen infizierten Nekrosen, infizierten Pseudozysten, Abszessbildung, 

Cholangitis und anderen extrapankreatischen Infektionen sowie Auftreten von Fieber. 

Eine gezielte Feinnadelaspiration (FNA) via endoskopischen Ultraschall (EUS) oder CT zum Nachweis einer Nekroseinfektion und Keimgewinnung ist 

prinzipiell wünschenswert, jedoch mit einer erheblichen Kontaminationsgefahr verbunden. 



Enterokokken, 


Anaerobier 

1. Wahl Meropenem 3 x 1 g Infusion über 2 h 

Alternative Imipenem/Cilastatin 3 x 1 g Infusion über 2 h 

7-10 d 

7-10 d

1.10 Infektiöse Enteritis/Enterocolitis 

Diagnostik: mindestens eine Stuhlkultur (auf darmpathogene bakterielle Erreger und Resistenz), ggf. erregerspezifische Ag-Nachweise im Stuhl. 

Bei Verdacht auf C. difficile Abnahme einer Stuhlkultur sowie mehrmalige Testung auf Toxin A/B (siehe 1.11), ggf. zusätzlich Untersuchung auf 

Protozoen 

Bei pseudoappendizitischen Bildern: Stuhluntersuchung auf Yersinien (Kälteanreicherung) und Abnahme der Yersinien-Serologie 

Bei blutigen Durchfällen: zusätzliche Untersuchung auf EHEC-Toxin (mögliche Assoziation mit HUS/TTP). 

Bei Verdacht auf Lebensmittelvergiftung sowie EHEC-Infektion keine Antibiotikagabe. 


Salmonellen, 

Shigellen, 

E. coli (ETEC), 

Campylobacter jejuni 

Initialtherapie Ciprofloxacin 1 2 x 500 mg p.o. 3-5 d 

unkomplizierte 

Reisediarrhoe 

Ciprofloxacin 

oder 

Rifaximin 

2 x 500 mg p.o. 

3 x 200 mg p.o. 

Giardia lamblia Lambliasis Metronidazol 3 x 500 mg p.o. 5-10 d 

1.11 Pseudomembranöse Enterocolitis 2 

Diagnostik: Einsendung von 3 Stuhlproben zur Testung auf Clostridium difficile-Toxin A/B, zusätzlich Anlage einer Stuhlkultur auf C. difficile 


Clostridium difficile 

(Toxinbildner) 

leichter Verlauf 3 Metronidazol 3 x 500 mg p.o. 10-14 d 4 

schwerer Verlauf 5 Vancomycin 6 4 x 250 mg p.o. 10-14 d 4 

kompliziert/Rezidiv 7 

Metronidazol 

plus 

Vancomycin 6 

3 x 500 mg i.v. 

4 x 250 mg p.o. 

3 d 

10-14 d 4 

1 

Bei fehlender klinischer Besserung nach 2-3 Tagen bzw. nachgewiesener Infektion mit Campylobacter spp.: Wechsel auf Clarithromycin 2 x 500 mg p.o. oder 

Azithromycin 1 x 500 mg p.o. 

2 

Hygienemerkblatt beachten: http://www.medizin.uni-halle.de/ihy/media/Merkblaetter/A.4.1%20CLOSTRIDIUM%20DIFFICILE.pdf 

3 

Leukozyten 20 GPT/l 

6 

Trinken der Infusionslösung, zur oralen Gabe Infusionslösung 24 h bei Kühlschranklagerung verwendbar 

7 

Bei V.a. Rezidiv gastroenterologisches Konsil anfordern

2 Leber- und Gallenwegsinfektionen 

2.1 Akute Hepatitis B 

Keine antivirale Therapie 

2.2 Chronische Hepatitis B 

Gastroenterologisches Konsil muss vor Beginn einer antiviralen Therapie durchgeführt werden. 

Aktuelle DGVS-Therapieleitlinie befolgen: http://www.dgvs.de/media/Leitlinie_Hepatitis_B_2011.pdf 

2.3 Hepatitis C 

Gastroenterologisches Konsil muss vor Beginn einer antiviralen Therapie durchgeführt werden. 

Aktuelle DGVS-Therapieleitlinie befolgen: http://www.dgvs.de/media/Leitlinie_Hepatitis_C_2010_ZfG.pdf 

2.4 Leberabzess 

Häufigste Entstehung cholangiogen, seltener portal-hämatogen bei anderen intraabdominellen Infektionen oder arteriell-hämatogen bei 

bakteriämischen Infektionen. Die Infektion ist in den meisten Fällen polymikrobiell. Differentialdiagnostisch ist immer auch an einen 

Amöbenleberabszess zu denken (E. histolytica-Serologie). Zu den wichtigsten Maßnahmen gehört die diagnostische und (bei pyogenem Abszess) 

therapeutische perkutane Drainage oder Punktion. 

Obligate Diagnostik: Blutkulturen (aerob/anaerob), Abszesspunktat für Mikrobiologie gewinnen, Grampräparat 


Anaerobier, 

Enterokokken, 


Entamoeba histolytica 

Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 7-14 d 

Metronidazol 

plus 

Paromomycin 

(zur enteralen Sanierung) 

3 x 750 mg Kurzinfusion 

3 x 500 mg p.o. 

10 d 

7-10 d

3 HIV-Infektion 

3.1 Therapieindikationen 

Akutes retrovirales Syndrom Behandlung erwägen 

HIV-Infektion Stadium A 1 

(CDC-Klassifikation) 

HIV-Infektion Stadium A 


HIV-Infektion Stadium B und C (AIDS) 


3.2 Primärtherapie der HIV-Infektion 

CD4-Zellen > 350 /µl (wiederholt) 

Beobachten 

(Behandlung anbieten, falls 

- CD4-Zellen mit stark fallender Tendenz 

oder 

- Viruslast >100.000 Kopien/ml) 

CD4-Zellen < 350 /µl (wiederholt) Behandeln 

unabhängig von CD4-Zellzahl Behandeln 

Vor Therapiebeginn infektiologisches Konsil unbedingt erforderlich. Initial und bei Unwirksamkeit der antiretroviralen Therapie: genotypische 

Resistenztestung. Ggf. Spiegelbestimmung der antiretroviralen Medikamente. Umstellung der antiretroviralen Medikation nur nach HIV-Konsil 2 . 

Substanzgruppen Empfohlene Präparate Dosierung Therapiedauer 

Nukleosidische Reverse 

Transkriptase-Inhibitoren 

(NRTI) 

Nicht-Nukleosidische 

Reverse-Transkriptase- 

Inhibitoren (NNRTI) 

Tenofovir/Emtricitabin 

oder 

Abacavir 3 /Lamivudin 

plus 

1 x (245 mg + 200 mg) p.o. 

1 x (600 mg + 300 mg) p.o. 

dauerhaft 

Efavirenz 4 1 x 600 mg p.o. zur Nacht dauerhaft 

oder 

Proteaseinhibitoren (PI) Lopinavir/Ritonavir 2 x (200 mg + 50 mg) p.o. dauerhaft 

1 

Bei HCV-Koinfektion frühzeitig Therapie anbieten 

2 

HIV-Konsil: Frau Dr. Lange (Hautklinik), Herr OA Dr. Kreft (Hautklinik), Herr OA Dr. Lübbert (KIM I), Herr OA Dr. Kegel (KIM IV), Herr Behlendorf (KIM IV) 

3 

Fachinfo Kivexa® beachten (vorab HLA-B*5701-Status bestimmen) 

4 

In der Schwangerschaft: Nevirapin (1 x 200 mg über 14 d, dann 2 x 200 mg, Leberwertkontrollen durchführen)

4 Herpesvirus-Infektionen (HSV, VZV, CMV) bei Erwachsenen 

4.1 Herpes simplex Virus (HSV) - Infektion 1 

Diagnostik: 

Direktnachweis: Antigennachweis und Virusisolierung (Material in Virustransportmedium „Virocult“, alternativ trockener Abstrich in NaCl 0,9%) aus 

Abstrich und/oder Bläscheninhalt. 

PCR: Liquor bei V.a. HSV-Enzephalitis (hohe Sensitivität in den ersten 3 Tagen) und Abstrich bei V.a. Herpes genitalis vor Geburt 

Genotypische (PCR) und phänotypische (Virusisolat) Resistenztestung 

Serologie: HSV1/2 IgG-, IgM-, IgA-Antikörper 

Herpes labialis/facialis (Rezidiv) 

Ausgedehnte/ schwere Manifestation, 

Primärinfektion (Gingivostomatitis 

herpetica 2 ) 

Bei Immunsuppression 

Herpes genitalis 

Primärinfektion² 

Bei schwerem Verlauf/ 

Immunsuppression 3 

Klinisch schwere Rezidiverkrankungen 

Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 

Aciclovir Creme 

Aciclovir 

Aciclovir 

Aciclovir 

Aciclovir 

Aciclovir 

1 

Bei Rezidiv oder klinischer Verschlechterung: Dermatologisches Konsil anfordern 

2 

Lokale Antiseptikabehandlung 

3 

Adstringierende (ZnO-Emulsion), antiseptische Lokaltherapie 

5 x täglich auftragen (nicht auf 

Schleimhäuten oder am Auge anwenden!) 

3 x 5 mg/kg KG Kurzinfusion 

oder 

3 x 400 mg p.o. 

3 x 5-10 mg/kg KG Kurzinfusion 

oder 

5 x 800 mg p.o. 

3 x 400 mg p.o. 

oder 



oder 

5 x 400 mg p.o. 

3 x 800 mg p.o. 

und anschließend 3 x 400mg p.o. 

5-7 d 

5-7 d 

7 d 

5-7 d 

7-10 d 

2 d 

und 5 d

Prophylaxe (> 6 Rezidive/Jahr) Aciclovir 2 x 400 mg p.o. max. 6 Monate 

Herpes-Enzephalitis Aciclovir 3 x 10-15 mg/kg KG Kurzinfusion 1 14-21 d 

Ekzema herpeticatum Aciclovir 3 x 7,5 mg/kg KG Kurzinfusion 7 d 

Keratokonjunktivitis herpetica 2 Aciclovir Augensalbe 

4.2 Varizella zoster Virus (VZV)-Infektionen 3 

5 x täglich in unteren Bindehautsack 

einbringen 

Diagnostik: 

Viruskultivierung, PCR: Material in Virustransportmedium 'Virocult', alternativ: trockener Abstrich in NaCl 0,9% 

PCR: Liquor bei V.a. Enzephalitis, BAL bei V.a. Pneumonie, Bläscheninhalt bei Immunsupprimierten oder Schwangerschaft 

Antikörper: VZV IgG-, IgM-, IgA-Antikörper 

max.14 d 


Zoster (Befall > 1 Dermatom) Aciclovir 3 x 7,5-10 mg/kg KG Kurzinfusion 7 d 

Schwere Infektionen 4 

Zoster ophthalmicus 5 

Zoster generalisatus 

VZV-Erkrankungen bei 

Immunsuppression 

Schwere Primärinfektion (Encephalitis, 

Pneumonie) 

Aciclovir 

ggf. anschließend 

Aciclovir 


5 x 800 mg p.o. 

1 

Bei verzögertem Therapieansprechen ggf. Tagesdosis als kontinuierliche Infusion und ggf. Resistenzbestimmung anfordern 

2 

Engmaschige augenärztliche Kontrollen durchführen 

3 

Lokaltherapie durchführen: adstringierend (ZnO-Emulsion) und antiseptisch (Cold Cream mit Polihexanid 0,06% und Aqua 30%) 

4 

Im Einzelfall zur Eindämmung einer Superinfektion Staphylokokken-wirksame Antibiotika-Therapie in Betracht ziehen, dermatologisches Konsil anfordern 

5 Augenärztliches Konsil anfordern 

7 d 

3-7 d

4.3 CMV-Infektionen 

Diagnostik: 

Monitoring für aktive systemische Infektion: qualitativer pp65-Antigen- oder quantitativer Genomnachweis (PCR) im EDTA-Blut 

Kurzzeitkultur, Virusisolierung (Material in Virustransportmedium „Virocult“, alternativ trockener Abstrich in NaCl 0,9%) und PCR aus Sekreten, 

Exkreten und Gewebebiopsien bei Organsymptomatik 


Serologie: CMV IgG-, IgM-Ak und CMV-IgG-Antikörperavidität: Eingrenzung des Infektionszeitpunkt, v.a. zum Nachweis / Ausschluss der CMV- 

Primärinfektion in der Schwangerschaft 

CMV-Erkrankung bei Immunsupression 

CMV-Erhaltungstherapie bei 

Immunsuppression 


Ganciclovir 1 

alternativ 

Foscarnet 2 

Valganciclovir 

2 x 5 mg/kg KG i.v. über 1h 

2 x 90 mg/kg KG i.v. über 2h 

2 x 450 mg p.o. 

(Einnahme zur Mahlzeit) 

14-21 d 

bis 14 d bzw. bis zum 

Abklingen der klinischen 

Symptome 

1 Bei Nicht-Ansprechen oder Anstieg der Viruslast (PCR) unter viraler Therapie infektiologisches Konsil anfordern 

2 Bei spezifischen Ganciclovir-Kontraindikationen (z.B. KM-Toxizität) oder Ganciclovir-Resistenz (UL97-Mutationen): Fachinformation unbedingt beachten!

5 Urogenitalinfektionen 

Diagnostik: Urinkultur vor empirischer Therapie (ggf. Kulturgewinnung über Einmalkatheter), primär keine Dauerkatheterisierung, immer urologische Abklärung bei 

komplizierten Harnwegsinfektionen 

5.1 Unkomplizierte Harnwegsinfekte (der Frau, prämenopausal, nicht schwanger, kein DK, keine Immunsuppression) 


E. coli, 


Proteus spp., 

Enterobacter spp., 

andere Enterobacteriaceae 

1. Wahl Cefuroxim 

Alternativen 

Fosfomycin 

oder 

Levofloxacin 

1. Tag 2 x 500 mg p.o. 

ab 2. Tag 2 x 250 mg p.o. 

1 x 3 g p.o. 

1 x 250 mg p.o. 

5.2 Komplizierte Harnwegsinfekte (Harnabflußstörungen, Urosepsis, Immunsuppression, D. mellitus) 


E. coli, 


Proteus spp., 

Enterobacter spp. 

seltener: 

andere 


P. aeruginosa, 

Enterokokken, 


Candida spp. 

fieberhaft, schwerer 

klinischer Verlauf 

Ceftriaxon 1,2 1 x 2 g Kurzinfusion 7 d (Männer 14 d) 

Urosepsis Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 7-14 d 

rezidivierende 

Harnwegsinfektionen 3 

Cefuroxim 1 x 250 mg p.o. (Prophylaxe) 

1 Oralisierung auf Cefuroxim 2 x 500 mg 

2 Enterokokken- und Pseudomonas-Lücke beachten 

3 Häufigkeit: >3 pro Jahr oder >2 in 6 Monaten, unbedingt urologisches Konsil durchführen (Urinansäuerung mit pH-Wert-Kontrollen erwägen) 

3 d 

3 d 

6 Monate 

(abendliche 

Einnahme)

5.3 Epididymitis, Prostatitis 

Bei Restharnbildung >100 ml: suprapubische Harnableitung indiziert 


E. coli, 

Klebsiella pneumoniae, 

Proteus spp., 


andere 



Enterokokken, 


Candida spp. 

1. Wahl Ciprofloxacin 1,2 2 x 500 mg p.o. 14 d 

5.4 Gonorrhoe, Chlamydien-Infektionen, Syphilis (Lues) 

Diagnostik: Abstrich auf Gonokokken (Kultur) und Chlamydien (PCR), jeweils Spezial-Abstrich-System, bei V.a. Lues TPPA-Test und Direktnachweis 

(PCR) anstreben. 

Bei allen Erkrankungen stets an Partnerbehandlung denken! 

Gonorrhoe 

Syphilis 3,4 


Ceftriaxon 

oder 

Azithromycin 

(bei V.a. auf Chlamydien- 

Koinfektion) 

1 x 250 mg i.m. oder 1 g i.v. 

1 x 1 g p.o. 

einmalig 

Frühsyphilis Penicillin-Benzathin 2,4 Mio I.E. i.m. einmalig 

Spätsyphilis oder 

Zeitpunkt der 

Infektion 

unbekannt 

bei Penicillin- 

Allergie 

Penicillin-Benzathin 2,4 Mio I.E. i.m. Tag 1, 8, 15 

Doxycyclin 2 x 100 mg p.o. 

1 Bei schlechtem Allgemeinzustand und hochfieberhaften Infektionen initiale i.v.-Therapie (dann 2 x 400 mg i.v.) erwägen 

2 Bei Niereninsuffizienz 2 x 250 mg p.o. Ciprofloxacin (Anpassung an GFR) 

3 Dermatologisches Konsil zwingend erforderlich, bei Neurosyphilis zusätzlich neurologisches Konsil 

4 Cave: Jarisch-Herxheimer-Reaktion zu Beginn der Behandlung, v.a. im Stadium II: ggf. Gabe von 50 mg Prednisolon p.o. vor erster Antibiotika-Gabe 

14 d (Frühsyphilis) 

28 d (Spätsyphilis)

Urogenitale Chlamydien- 

Infektion 

5.5 Adnexitis 

Neurosyphilis, 

Syphilis bei HIV- 

Infektion 1 

Penicillin G 

oder 

Ceftriaxon 

3 x 10 Mio I.E. Kurzinfusion 

initial 1 x 4 g Kurzinfusion 

danach 1 x 2 g Kurzinfusion 

14-21 d 

1. Wahl Doxycyclin 2 x 100 mg p.o. 14 d 

in der 

Schwangerschaft 

Azithromycin 1 x 1 g p.o. einmalig 

Empirische Therapie möglichst nach Abnahme von Kulturen (Abstrich und Blutkulturen), Chlamydien-Diagnostik (PCR aus Abstrich) durchführen 


Chlamydien, 

Mykoplasmen, 

E. coli, 

Gonokokken, 

Staphylococcus aureus, 


Enterokokken, 

Klebsiellen, 

Anaerobier 

1. Wahl 

1 Liquorpunktion mit PCR-Diagnostik zwingend erforderlich 

2 Bei gutem klinischen Ansprechen Umstellung auf orale Gabe 

Doxycyclin 

plus 

Cefuroxim 

2 x 100 mg Kurzinfusion 2 

initial 2 x 1,5 g Kurzinfusion über 3 d 

dann 2 x 500 mg p.o. 

14 d

6 Haut- und Weichteilinfektionen 

6.1 Erysipel 

Bei Rezidiven oder unklarer Symptomatik: Blutkulturen abnehmen 

Begleitende Maßnahmen: Extremität ruhig stellen und hochlagern, auf Thromboseprophylaxe achten 


S. pyogenes, 

seltener Staphylokokken 

6.2 Hautphlegmone 

1. Wahl Penicillin G 1 3 x 5-10 Mio I.E. Kurzinfusion 7-14 d 

Prophylaxe bei 

häufigen 

Rezidiven 

Penicillin-Benzathin 1 

oder 

Penicillin V 1 

1,2 MU / Monat i.m. 

2 x 1 g p.o. 



seltener Staphylokokken 

1. Wahl Cefuroxim 3 x 1,5 g Kurzinfusion 

Alternativen 

Clindamycin 

oder 

Amoxicillin/Clavulansäure 

3 x 600 mg p.o. 


6.3 Furunkel 

In der Regel keine Antibiotikagabe notwendig, sondern primär chirurgische Behandlung (Inzision, Entleerung), antiseptische Nachbehandlung 

1 Bei nachgewiesener Penicillin-Allergie: Clarithromycin 2 x 500 mg p.o. 

7-10 d

6.4 Abszess /Furunkulose 1 

Diagnostik: Abstrich an Mikrobiologie 

Therapieindikation bei Immunsuppression, systemischen Infektionszeichen, hohem Fieber, Gesichtsmanifestation 



Streptokokken 

6.5 Postoperative Wundinfektionen 

1. Wahl Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 2,2 g Kurzinfusion 

Alternative Cefuroxim 3 x 1,5 g Kurzinfusion 

Chirurgische Sanierung durchführen, Wundabstrich und Blutkulturen an Mikrobiologie versenden 

Antibiotikatherapie nur bei Fieber >4 Tage nach der OP oder Erythem >5 cm vom Inzisionsrand 


Mischinfektionen 1. Wahl 

Cefuroxim 2 

oder 

Amoxicillin/Clavulansäure 3 

oder 

Piperacillin/Tazobactam 3 




6.6 Nekrotisierende Fasziitis 

Primär chirurgisches Debridement, intraoperative Abstriche und Blutkulturen an Mikrobiologie versenden, MRT-Diagnostik, HBO-Therapie erwägen, 

Umstellung bei gesichertem Streptokokken-Nachweis (dann hochdosiert Penicillin G plus Clindamycin, Antibiogramm beachten) 


Mischinfektionen, 



Anaerobier, 


1. Wahl 

Piperacillin/Tazobactam 4 

plus 

Clindamycin 

1 

Rezidivierende Furunkulose: keine antibiotische Prophylaxe durchführen, dermatologisches Konsil anfordern 

2 

Bei perkutanen Eingriffen 

3 

Bei vorab durchgeführter perioperativer Prophylaxe mit Cephalosporinen 

4 

Einsatz eines Carbapenems bei initial schwerem Verlauf erwägen 



7-10 d 

7 d 

14 d

6.7 Impetigo contagiosa 1 

Häufige Erreger Topische Therapie Dosierung Therapiedauer 

S. pyogenes, 

S. aureus 2 

6.8 Diabetischer Fuß 

Retapamulin (Creme) 

oder 

Fusidinsäure (Creme/Salbe) 

2 -3 x täglich dünn auftragen 5 d 

Probengewinnung: Keine oberflächlichen Abstriche, sondern nach Wundsäuberung vom Wundgrund, alternativ Materialgewinnung durch Debridement, 

Exzision oder Aspiration aus der Wundtiefe. Bei systemischen Infektionszeichen Abnahme von Blutkulturen (mindestens 2 Paare). Detektion einer 

Knochenbeteiligung durch MRT am sensitivsten. 





Anaerobier 

Klinisch leichte 

bis mittelgradige 

Infektion 

bei V.a. MRSA 

schwere 

Infektion 

bei V.a. MRSA 

Clindamycin 

oder 


Linezolid 


oder 


zusätzlich 

Daptomycin 

oder 

Umstellung auf 

Tigecyclin 

1 Bei komplexen Fällen: Dermatologisches Konsil 

2 Falls S. aureus nachgewiesen wird: Zusätzlich Mupirocin-Nasensalbe 

3 Ohne Beteiligung der Sehnen bzw. Knochen 

4 Mit Beteiligung von Sehnen bzw. Knochen 

3 x 600 mg stationär Kurzinfusion, ambulant p.o. 


2 x 600 mg p.o. 



6 mg/kg KG Kurzinfusion 

2 x 50 mg Kurzinfusion (loading dose: 100mg) 

7-14 d 3 

(bis 4-6 Wochen 4 ) 

max. 4 Wochen 

2-4 Wochen 3 

(bis 4-6 Wochen 4 )

7 Knochen- und Gelenkinfektionen 

Bei MRSA-Nachweis obligatorisches infektiologisches Konsil! 

7.1 Akute hämatogene Osteomyelitis 

Vor empirischer Therapie sind Blutkulturen und Biopsie des betroffenen Knochens unbedingt anzustreben! Bei MRSA-Nachweis infektiologisches 

Konsil! Bis zum Vorliegen des Kulturergebnisses mit Antibiogramm erfolgt die Therapie wie folgt: 


S. aureus, 

beta-hämolysierende 

Streptokokken Gruppe A, B, C, G, 

andere Enterobacteriaceae, 

(selten Salmonellen) 

Cefuroxim 

plus 

Rifampicin 

7.2 Postoperative Osteitis – Frühinfektion (8 Wochen 


Cefuroxim 



Staphylokokken 

1. Wahl 

plus 

Rifampicin 

1 



2-4 Wochen 

Alternative 

1 


Clindamycin 

plus 

Rifampicin 

7.3 Postoperative Osteitis – Spätinfektion (>3 Wochen postoperativ) 

Primär ist die chirurgische Sanierung und mikrobiologische Erregersicherung (Knochenbiopsie, Blutkulturen) anzustreben! Bei Entwicklung einer 

chronischen Infektion ist eine chirurgische Materialentfernung zwingend erforderlich. 


Mischinfektionen, 



Enterokokken, 


Anaerobier 

1 Nach Möglichkeit rasche Oralisierung 


plus 

Rifampicin 



2-4 Wochen

7.4 Sternumosteitis 

Primär ist die chirurgische Sanierung und mikrobiologische Erregersicherung (Knochenbiopsie, Blutkulturen) anzustreben! 


S. aureus, 

Koagulase-negative 

Staphylokokken (KNS) 

1. Wahl 

Flucloxacillin 

plus 

Fosfomycin 

3 x 4 g Kurzinfusion 


Alternative Daptomycin 1 x 6-8 mg/kg KG Kurzinfusion 

bei Vorliegen 

einer 

Mediastinitis 

Meropenem 

plus 

Fosfomycin 



2-4 Wochen 

7.5 Septische Arthritis, infizierte Gelenkprothesen (4 Wochen postoperativ, sekundäre Infektion) 

Entfernung der Prothese, Probengewinnung, Antibiotikagabe nur spezifisch nach Erregernachweis 

2-4 Wochen 

7.7 Chronische Osteomyelitis 

Chirurgisches Debridement zwingend erforderlich, Antibiotikagabe nur spezifisch nach Erregernachweis. Wenn Infektion über 8 Wochen persistiert, ist 

der Therapieversuch als gescheitert anzusehen.

7.8 Spondylodiszitis/Spondylitis 

Diagnostik: Vor empirischer Therapie sind Blutkulturen und Biopsie des betroffenen Knochens unbedingt anzustreben! Zur Abklärung einer möglichen 

Knochentuberkulose zusätzlich Testung mittels IGRA (T-SPOT.TB-Test). Ggf. MRT zum Ausschluss einer epiduralen Abszessbildung. 

Supportivmaßnahme: Ruhigstellung (ggf. Korsett) 


S. aureus, 


seltener gramnegative Keime 

7.9 Knocheninfektionen durch MRSA 

Infektiologisches Konsil zwingend erforderlich! 


plus 

Clindamycin 


3 x 600 mg Kurzinfusion (stationär), ambulant p.o. 

mind. 4-6 Wochen 


MRSA 

Daptomycin 

anschließend 

Linezolid 

6-8 mg/kg KG Kurzinfusion 


4-6 Wochen 

max. 4 Wochen

8 Endokarditis 

Kardiologisches Konsil zwingend erforderlich! 

Diagnostik: 

Grundsätzlich mindestens 3 separat entnommene Blutkulturen vor Beginn der antimikrobiellen Therapie 1 

Entnahme von Blutkulturen unabhängig von der Körpertemperatur 

Unbedingt Mitteilung der Verdachtsdiagnose Endokarditis an das mikrobiologische Labor (verlängerte Bebrütung!) 

8.1 Endokarditis mit unbekanntem Erreger 2 

Häufige Erreger Situation Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 



Enterokokken, 

selten Bakterien der 

HACEK-Gruppe, 

sehr selten Pilze 

Nativklappe 

oder 

Kunstklappe/ 

intrakardiales Implantat, 

>12 Monate 

postoperativ 

Nativklappe bei 

Penicillinallergie 

Kunstklappe/ 

intrakardiales Implantat, 

48 h 

2 Gemäß aktueller Leitlinie der European Society of Cardiology (ESC) von 2009: 

http://www.escardio.org/guidelines-surveys/esc-guidelines/GuidelinesDocuments/guidelines-IE-FT.pdf 

3 Entspricht 80 kg Körpergewicht – empfohlene Dosierung 3 mg/kg KG in 3 Einzelgaben. Drugmonitoring: Bestimmung des Talspiegels (Ziel:

8.2 Endokarditis mit bekanntem Erreger 

Weiterführende Therapiehinweise und Empfehlungen bitte der aktuellen Leitlinie der European Society of Cardiology (ESC) von 2009 entnehmen: 

http://www.escardio.org/guidelines-surveys/esc-guidelines/GuidelinesDocuments/guidelines-IE-FT.pdf

9 Atemwegsinfektionen 

9.1 Akute Bronchitis 

9.1.1 Akute Bronchitis bei Patienten ohne COPD 

Im Regelfall ist keine antimikrobielle Therapie erforderlich. 

9.1.2 Akute Exazerbationen der COPD 

Antibiotische Therapie nur bei purulentem Sputum und/oder relevanter Entzündungskonstellation. 


S. pneumoniae, 

H. influenzae, 

M. catarrhalis, 


bei Risikofaktoren 

für P. aeruginosa 

ambulant Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 1 g p.o. 

stationär Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 2,2 g Kurzinfusion 1 

1 Umstellung auf orale Medikation (Sequenztherapie), sobald klinisch vertretbar 

siehe Pneumonie 

5-7 d

9.2 Ambulant erworbene Pneumonie (Community-acquired pneumonia – CAP) 1 

1.1.1 CRB-65-Score und Risikoklassifizierung 

CRB-65-Score Kriterium Punkte 

Alter >65 Jahre 1 

Verwirrung (Confusion) Vorhanden 1 

Atemfrequenz (Respiratory Rate) >30/min 1 

Blutdruck (Blood Pressure)

9.2.1 Ambulant erworbene Pneumonie (CAP), CRB-65 = 0, ambulante Therapie 

Unverzüglich Antibiotikatherapie einleiten 




M. pneumoniae, 

C. pneumoniae 

1. Wahl Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 1 g p.o. 5-7 d 

Alternative bei 

V.a. atypische 

Pneumonie 

Azithromycin 1 x 500 mg p.o. 3 d 

9.2.2 Ambulant erworbene Pneumonie (CAP), CRB-65 ≥1 1 , keine weiteren Risikofaktoren 

Stationäre Aufnahme, unverzüglich Antibiotikatherapie einleiten 

Diagnostik vor erster Antibiotikagabe: Abnahme von Blutkulturen (2 separat entnommene Paare), PCT-Bestimmung 2 bei IMC- oder 

Intensivbehandlungspflichtigkeit, ggf. Legionella-Ag-Test im Urin 



M. pneumoniae, 


C. pneumoniae 

1. Wahl Moxifloxacin 1 x 400 mg Kurzinfusion oder p.o. 5-7 d 

Alternative 


plus 



2 x 500 mg p.o. 

9.2.3 Ambulant erworbene Pneumonie (CAP), CRB-65 ≥1 1 , mit Risikofaktoren für P. aeruginosa 

Stationäre Aufnahme, unverzüglich Antibiotikatherapie einleiten 

Diagnostik vor erster Antibiotikagabe: Abnahme von Blutkulturen (2 separat entnommene Paare), PCT-Bestimmung 2 bei IMC- oder 

Intensivbehandlungspflichtigkeit, ggf. Legionella-Ag-Test im Urin 


S. pneumoniae, M. pneumoniae, 

C. pneumoniae, H. influenzae, 

seltener: S. aureus, Enterobacteriaceae, 

Legionellen, P. aeruginosa 


plus 



2 x 500 mg p.o. 

1 Bei CRB-65-Score ≥2 Aufnahme auf IMC- oder Intensivstation, pneumologisches Konsil anfordern! 

2 Nach 3-5 Tagen erneut PCT-Bestimmung zur Reevaluierung der Therapie; Erwägung der Beendigung der Therapie (nach frühestens 5 Tagen), wenn PCT

9.3 Nosokomiale Pneumonie (Hospital-aquired pneumonia - HAP) 

Die hausinternen SOP’s DO 1.10 bis DO 1.12 sind in allen Punkten im Sinne einer ausführlicheren Verfahrensanweisung zu beachten und hier nur 

auszugsweise dargestellt, siehe Intranet: 

http://www.medizin.uni-halle.de/media/Intranet/Qualitaetsmanagement/2011/SOP_DO_1.10_nos_Pneumonien_Diag_The_Prophy.pdf 

http://www.medizin.uni-halle.de/media/Intranet/Qualitaetsmanagement/2011/SOP_DO_1.11_nos_Pneumonien_Diagnose.pdf 

http://www.medizin.uni-halle.de/media/Intranet/Qualitaetsmanagement/2011/SOP_DO_1.12_nos_Pneumonien_Therapie.pdf 

1.1.2 Risikostratifizierung (nach den Empfehlungen der Paul-Ehrlich-Gesellschaft für antibakterielle Chemotherapie, www.p-e-g.org) 

Alter >65 Jahre 1 Punkt 

Strukturelle Lungenerkrankung 2 Punkte 

Antiinfektive Vorbehandlung 2 Punkte 

Late-Onset Pneumonie ab dem 5. Behandlungstag 3 Punkte 

Schwere respiratorische Insuffizienz 3 Punkte 

Extrapulmonales Organversagen 4 Punkte 

Die antimikrobielle Therapie ist unverzüglich (innerhalb von 1 h nach Diagnosestellung) einzuleiten! 

9.3.1 Nosokomiale Pneumonie, 1-2 Risikopunkte 

Diagnostik vor Antibiotikagabe: Abnahme von Blutkulturen, PCT-Bestimmung 1 bei IMC- oder Intensivbehandlungspflichtigkeit, Gewinnung von 

Trachealsekret, ggf. Bronchoskopie mit BAL 




S. aureus, 


P. aeruginosa 

1. Wahl Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 2,2 g Kurzinfusion 7-10 d 

Alternative Ceftriaxon 1 x 2 g Kurzinfusion 7-10 d 


9.3.2 Nosokomiale Pneumonie, 3-5 Risikopunkte 


Trachealsekret, ggf. Bronchoskopie mit BAL 


S. aureus, 




E. coli, 

Acinetobacter spp., 

S. maltophilia, 

Anaerobier 

1. Wahl Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 7-14 d 

Alternative Meropenem 3 x 1 g Kurzinfusion 7-14 d 

9.3.3 Nosokomiale Pneumonie, >6 Risikopunkte 


Trachealsekret, ggf. Bronchoskopie mit BAL. Immer antibiotische Kombinationstherapie mit synergistischen Partnern anstreben! 


wie 9.3.2 

sowie vermehrt 

multiresistente Erreger 

1. Wahl 

Alternative 

bei V.a. MRSA 1. Wahl 


plus 

Ciprofloxacin 

Meropenem 

plus 

Amikacin 2 

zusätzlich Gabe von 

Linezolid 




1 x 15 mg/kg KG als Kurzinfusion 

7-14 d 

7-14 d 

3-5 d 

2 x 600 mg Kurzinfusion/p.o. 7-14 d 


9.4 Aspirationspneumonie, abszedierende Pneumonien 





andere 


Anaerobier 

ambulant erworben Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 2,2 g Kurzinfusion 

nosokomial 

1. Wahl 

Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 

Alternative Imipenem/Cilastatin 3 x 1 g Kurzinfusion 

nach klinischem Verlauf 

in der Regel 7-14 d 

9.5 Pneumocystis jiroveci-Pneumonie 

Interstitielle Pneumonie bei immunsupprimierten Patienten oder Patienten mit HIV-Infektion, die eine intensivierte Diagnostik erfordert. Erregernachweis 

erfolgt mikroskopisch (spezielle Färbungen) und mittels PCR im induzierten Sputum oder besser in der BAL (bei dringendem Verdacht sofortige 

Einleitung der Therapie, nachgezogene Diagnostik möglich). 


Pneumocystis jirovecii 

9.6 Influenza 2 

1. Wahl Trimethoprim/Sulfamethoxazol 1 3 x 40 mg/kg KG als Kurzinfusion 3 Wochen 


Unverträglichkeit 

leichte Form bzw. 

Unverträglichkeit 

von o.g. 

Pentamidin 4 mg/kg KG i.v. über 4 h 3 Wochen 

Atovaquon 2 x 750 mg p.o. 3 Wochen 

Diagnostik: Kultureller Nachweis und ggf. RT-PCR mit Subtypisierung nach H- und N-Antigenen aus respiratorischen Materialien (tiefer Abstrich von 

Nasen-/Rachensekret, Rachenspülung, BAL etc.) 

Therapiebeginn möglichst innerhalb von 12-24 h (spätestens 48 h) nach Symptombeginn 


Influenza A und B 

1. Wahl Oseltamivir 2 x 75 mg p.o. 

Alternative Zanamivir 2 x 10 mg Inhalation 

1 Zusätzlich initial Gabe von Prednisolon 1 mg/kg über 5 Tage (anschließend halbe Dosis für weitere 5 Tage) 

2 Ungeimpfte Patienten mit schweren Grunderkrankungen des Herz-Kreislauf-Systems oder schwerem Immundefekt können bei Exposition gegebenenfalls 

Oseltamivir prophylaktisch erhalten 

5 d

9.7 Pleuraempyem 1 

Pneumologisches Konsil zwingend erforderlich! Primäre Therapie im Frühstadium mittels Anlage einer großlumigen Thorax-Saugspül-Drainage oder 

VATS; bei fortgeschrittenerem Stadium (bereits vorhandene Höhlenbildung, Kammerung oder Verschwartung) umgehende thoraxchirurgische Therapie 

mit Dekortikation. 

Häufigste Ursache eines Pleuraempyems ist eine schwere pulmonale Infektion (Aspirationspneumonie, Lungenabszess); seltener Entstehung nach 

Thorakotomie, eitriger Infektion im Halsbereich oder Oberbauch, Ösophagusverletzung, sehr selten hämatogen. 

Makroskopisch nicht-eitrige Pleuraexsudate im Zusammenhang mit Lungeninfektionen werden wie ein Pleuraempyem behandelt bei 

pH

9.8 Tuberkulose 

Pneumologisches Konsil zwingend erforderlich! 

Diagnostik: Erhebung der Infektionsanamnese, kultureller Erregernachweis (Sputum, BAL, Biopsien, Punktate), ggf. PCR-Verfahren, Interferon- 

Gamma-Release-Assay (IGRA, vorzugsweise T-SPOT.TB-Test), bildgebende Diagnostik (Röntgen, CT) 


Mycobacterium 

tuberculosis 

Initialtherapie 1,2 

Weiterbehandlung 

Isoniazid 3 (+ Vitamin B6) 

plus 

Rifampicin 3 

plus 

Pyrazinamid 

plus 

Ethambutol 3 

Isoniazid 

plus 

Rifampicin 

1 x 300 mg p.o. 

1 x 600 mg p.o. 4 

1 x 1500 mg p.o. (≤ 60 kg) 

1 x 2000 mg p.o. (> 60 kg) 

1 x 1200 mg p.o. (≤ 60 kg) 

1 x 1600 mg p.o. (> 60 kg) 

1 x 300 mg p.o. 

1 x 600 mg p.o. 

2 Monate 

≥4 Monate 

(Therapiedauer abhängig von 

Organmanifestation 5 ) 

1 

In der Schwangerschaft: Isoniazid + Rifampicin + Ethambutol 

2 

Bei Einschränkung der Leber- oder Nierenfunktion, Alter >65 Jahre oder Gewicht

10 Schwere Sepsis ohne erkennbare Eintrittspforte / Fokus 

Diagnosekriterien für Sepsis, schwere Sepsis und septischen Schock (nach ACCP/SCCM Konsensus-Konferenz- 

Kriterien sowie Leitlinien der deutschen Sepsis-Gesellschaft) 1 

I Nachweis der Infektion 

Diagnose einer Infektion über den mikrobiologischen Nachweis oder durch klinische Kriterien 

II Systemic inflammatory response syndrome (SIRS) (mind. 2 Kriterien) 

Fieber (>38°C) oder Hypothermie (90/min 

Tachypnoe (Frequenz >20/min) oder Hyperventilation (PaCO2

Bei Diagnosestellung einer Sepsis: 

Antimikrobieller Therapiebeginn möglichst innerhalb von 30 Minuten 

Ausreichende initiale Volumengabe von mind. 500-1000 ml kristalloider Lösung (z.B. Jonosteril®) über 30-60 Min. 

Verlegung des Patienten auf IMC oder ITS erwägen 

PCT-Bestimmung 1 

Weiterführende detaillierte Therapiehinweise und Empfehlungen bitte der aktuellen Leitlinie entnehmen: S2-Leitlinie - Prävention, Diagnose, Therapie und 

Nachsorge der Sepsis; Leitlinie der Deutschen Sepsis-Gesellschaft und der Deutschen Interdisziplinären Vereinigung für Intensiv- und Notfallmedizin: 

http://www.awmf.org/leitlinien/detail/ll/079-001.html 

10.1 Sepsis - unbekannter Infektionsherd, ambulant erworben (meist pneumogen oder urogen) 


Pneumokokken, 



E. coli, 

Enterokokken, 


selten P. aeruginosa 

1. Wahl 

Eskalation 

Ceftriaxon 

plus 

Ciprofloxacin 


plus 

Ciprofloxacin 

10.2 Sepsis - unbekannter Infektionsherd, nosokomial erworben 





7-14 d 

klinische Reevaluierung 

alle 48 h 1 




E. coli, 

Enterokokken, 



andere 


1. Wahl 

Eskalation 


plus 

Ciprofloxacin 

Meropenem 

plus 

Ciprofloxacin 

1 Regelmäßige PCT-Bestimmung zur Reevaluierung der Therapie 





7-14 d 


alle 48 h 1

10.3 Sepsis - unbekannter Infektionsherd mit Verdacht auf Katheterinfektion 

Es wird empfohlen, Blutkulturen vor Entfernung des ZVK über den noch liegenden Katheter und zeitgleich über eine periphere Vene abzunehmen und 

die Kulturergebnisse miteinander zu vergleichen 1 



Staphylokokken (KNS), 


gramnegative 

Stäbchenbakterien, 

Corynebacterium 

jeikeium, 

Propionibakterien, 

Candida spp. 

1. Wahl 

Eskalation 


plus 

Vancomycin 2 

Meropenem 

plus 

Vancomycin 2 


2 x 1 g i.v. über 1 h 



7-14 d 


alle 48 h 3 

7-14 d 


alle 48 h 3 

Die weitere Adaptation der antimikrobiellen Therapie bei bekanntem Fokus erfolgt gemäß den Empfehlungen in den Kapiteln der 

entsprechenden Organgruppe dieses Leitfadens bzw. nach Resistogramm. 

1 Referenz: PEG-Empfehlungen 2010 (www.p-e-g.org) 

2 Drugmonitoring: Bestimmung des Talspiegels (Ziel: 15-20 mg/l) empfohlen 

3 Regelmäßige PCT-Bestimmung zur Reevaluierung der Therapie

11 Katheterinfektionen 

Definitionen (zur Anwendung für die folgenden Kathetertypen: getunnelte Katheter wie Hickman-Katheter, Permcath etc. sowie Portsysteme) 

Gesicherte Katheter-assoziierte Infektion: Nachweis desselben Erregers an der Katheterspitze und in der Blutkultur oder Erregernachweis in peripherer 

und zentraler Blutkultur (siehe Diagnostik). 

Wahrscheinliche Katheter-assoziierte Infektion: Vorliegen einer lokalen Katheterinfektion und positive Blutkultur oder Sistieren von Fieber innerhalb 48 h 

nach Entfernung des Katheters. 

Mögliche Katheter-assoziierte Infektion: Nachweis eines Erregers in der Blutkultur, der typischerweise Katheterinfektionen verursacht (siehe häufigste 

Erreger) oder positive Blutkultur ohne anderen Fokus bei liegendem zentralen Katheter 

Erforderliche Diagnostik 

2-3 Paare Blutkulturen peripher und zentral 

Abstrich der Einstichstelle an Mikrobiologie 

Kultur der Katheterspitze (Katheterspitze unter sterilen Kautelen abschneiden und an Mikrobiologie senden, dort Untersuchung der Katheterspitze) 

Häufigste Erreger 

Therapie 

Koagulase-negative Staphylokokken (KNS), Enterokokken, S. aureus, Candida spp., seltener Enterobacteriaceae, P. aeruginosa, E. coli und andere 

Wichtigste Maßnahme: sofortige Katheterentfernung anstreben, bei S. aureus und Candida spp. ist diese obligat 1 

Empirische antimikrobielle Therapie wie angegeben, ggf. Therapieumstellung in Abhängigkeit vom mikrobiologischen Erregernachweis 

11.1 Empirische initiale Therapie 



Staphylokokken (KNS), 

Enterokokken, 

S. aureus 

keine 

antibiotische 

Vortherapie in 

den letzten 4 

Wochen 

Vancomycin 2 2 x 1 g i.v. über 1 h 2 Wochen 

1 Unter entsprechenden Rahmenbedingungen kann alternativ zur Katheterentfernung eine „Antibiotic-lock Therapie“ (z.B. mit Vancomycin 5 mg/ml, Injektion von 10 

ml dieser Lösung) in Betracht gezogen werden, jedoch nur nach Rücksprache mit dem zuständigen bzw. diensthabenden Oberarzt. 

2 Drugmonitoring: Bestimmung des Talspiegels (Ziel: 15-20 mg/l) empfohlen, bei Niereninsuffizienz obligat

zusätzlich 



(Candida spp.) 

antibiotische 

Vortherapie in 

den letzten 4 

Wochen 1 

Vancomycin 2 

plus 




11.2 Spezifische Therapie bei bekanntem Erreger 

Generell ist das vorliegende Resistogramm zu beachten! Dosisanpassung bei eingeschränkter Nierenfunktion! 

2 Wochen 

Erreger Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 


Staphylokokken (KNS) 

S. aureus (MSSA) 

S. aureus (MRSA) 

Enterococcus faecalis 

Enterococcus faecium 

1. Wahl 

Vancomycin 2,3 

plus 

Rifampicin 


plus 

Rifampicin 

Vancomycin 2,3,4 

plus 

Rifampicin 

Ampicillin/Sulbactam 

plus 

Gentamicin 5 

Vancomycin 2,4 

plus 

Gentamicin 5 


2 x 450 mg i.v./p.o. 

3 x 4 g i.v über mind. 1 h 

2 x 450 mg i.v./p.o. 


2 x 450 mg i.v./p.o. 


1 x 3 mg/kg KG mg Kurzinfusion 



5-7 d 

mind. 2 Wochen 3 


7-14 d 

3-5 d 

7-14 d 

Alternative Daptomycin 1 x 6 mg/kg KG Kurzinfusion 7-14 d 

Candida spp. 6 Caspofungin 7 

1. Tag 1 x 70 mg i.v. 

ab 2. Tag 70 kg 1 x 70 mg i.v. 

3-5 d 


1 

Bei Patienten mit hohem Risiko für Pilzinfektionen sollte eine zusätzliche antimykotische Therapie erfolgen � siehe Kapitel „Pilzinfektionen“ 

2 

Drugmonitoring: Bestimmung des Talspiegels (Ziel: 15-20 mg/l) empfohlen, bei Niereninsuffizienz obligat 

3 

Monitoring der Antibiotikatherapie mittels Blutkulturen: Beendigung der Therapie erwägen, wenn 2 konsekutive Blutkulturen negativ sind. 

4 

Alternative Therapie bei Niereninsuffizienz (GFR

12 Neutropenie und Fieber 

Definitionen 

einmalige Körpertemperatur >38,3°C bzw. zweimalig Temperatur >38 °C innerhalb 12 h (kurzfristige Nachmessungen) 

neutrophile Granulozyten

12.2 Empirische Initialtherapie – Niedrigrisiko � stationäre Aufnahme 

Definition: - erwartete Neutropenie ≤7 Tage 

- Fluorochinolonprophylaxe durchgeführt 

- z.B. bei: ALL (außer unter Hochrisiko genannte Zyklen), CHOP, Bendamustin, EC 



K. pneumoniae, 

E. coli, 

S. aureus, 

S. epidermidis, 


Candida spp., 

Aspergillus spp., 

Mucor spp. 

1. Wahl Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 


Penicillinallergie 

Imipenem/Cilastatin 3 x 1 g Kurzinfusion 

12.3 Empirische Initialtherapie – Niedrigrisiko � mit Möglichkeit der ambulanten Behandlung* 

Definition: - erwartete Neutropenie ≤7 Tage 

- keine Fluorochinolonprophylaxe durchgeführt 

- keine relevanten Komorbiditäten 

- z.B. bei: ALL (außer unter Hochrisiko genannte Zyklen), CHOP, Bendamustin, EC 

- orale Therapie möglich, erste Gabe noch im Krankenhaus 

*nur nach Rücksprache mit zuständigem Oberarzt (Hämatologie bzw. therapieindizierende Fachabteilung) 

bis über 72 h fieberfrei 

und 

1) wenn Granulozyten 

weiter 1000/µl: 

für mind. 2 weitere Tage 




E. coli, 

S. aureus, 



Candida spp., 


Mucor spp. 

1. Wahl 

Ciprofloxacin 

plus 


2 x 750 mg p.o. 

2 x 1 g p.o. 

bis über 72 h fieberfrei 

und 

1) wenn Granulozyten 

weiter 1000/µl: 

für mind. 2 weitere Tage

12.4 Eskalation bei klinischer Verschlechterung (Hoch- und Niedrigrisiko) 




E. coli, 

S. aureus, 



Candida spp., 


Mucor spp. 

Hochrisiko und 

Niedrigrisiko 

bei schwerer 

Sepsis oder 

septischem 

Schock 1 

Imipenem/Cilastatin 3 x 1 g Kurzinfusion 

plus 

Amikacin 

1 x 15 mg/kg KG Kurzinfusion 2 

12.5 Eskalation bei persistierendem Fieber und Neutropenie nach 96 h (ohne Fokus und Erregernachweis) 

Diagnostik: - erneute Anamnese und gründliche klinische Untersuchung (Pulmo, Cor, Abdomen, Haut, Mund, Rachen, Genitoanalregion) 

- mind. 2 Paare Blutkulturen 

- Na, K, Crea, Harnstoff, ALAT, ASAT, GGT, CRP, Quick, PTT, Diff.-BB 

- Urinstatus und -sediment 

- CT-Thorax 3 , Sonographie Abdomen 

- weitere Diagnostik nach Fokus 

nach Klinik 

(bis Pat. ohne klinische 

Symptome und Fieber 

ist, Therapieende 

abhängig von der 

Fortdauer der 

Neutropenie) 




E. coli, 

S. aureus, 



Candida spp., 


Mucor spp. 

Hochrisiko 


plus 

Caspofungin 4 


1. Tag 1 x 70 mg i.v. 

ab 2. Tag 70 kg 1 x 70 mg i.v. 

Niedrigrisiko Imipenem/Cilastatin 3 x 1 g Kurzinfusion 

bei schwerer 

Sepsis oder 

septischem 

Schock 1 

plus 

Amikacin 


1 Verlegung auf ITS 

2 Drugmonitoring: Bestimmung des Talspiegels (Ziel: 15-20 mg/l) empfohlen, bei Niereninsuffizienz obligat 

3 Bei V.a. atypische Pneumonie: Bronchoskopie mit BAL durchführen, zusätzliche Therapie mit Clarithromycin 2 x 500 mg p.o. 

4 Bei fortgeschrittener Leberinsuffizienz (Child-Pugh-Score ≥7-9 Pkt.) Dosisreduktion auf 35 mg/d 

nach Klinik 

(bis Pat. ohne klinische 

Symptome und Fieber 

ist, Therapieende 

abhängig von der 

Fortdauer der 

Neutropenie)

12.6 Weitere Therapie bei identifiziertem Fokus 

Immer als Basis β-Laktam-Antibiotikum beibehalten + fokusspezifische Therapie (siehe entsprechende Kapitel) 

12.7 Hinweise zum Einsatz von Vancomycin 

Der Einsatz von Vancomycin ist unter den folgenden Kautelen empfohlen: 

bei Mucositis CTC III-IV° 

bei MRSA-Besiedelung 

Nachweis grampositiver Kokken in der Blutkultur mit noch ausstehendem Resistogramm 

bei Katheterinfektionen

13 Fieber unklarer Genese (FUG) bzw. Fever of Unknown Origin (FUO)

14 Malaria 

Indikation 

Material: 

V.a. Malaria; Patienten mit unklarem, meistens (aber nicht immer!) febrilem Krankheitsbild mit oder ohne Organsymptomatik nach Aufenthalt in einem 

Malariaendemiegebiet (Übersichtskarte: siehe z.B. http://www.cdc.gov/malaria/about/distribution.html) 

EDTA-Blut (rotes Blutbildröhrchen, für Mikroskopie und immunchromatographische Schnelldiagnostik) nach telefonischer Vorankündigung mit höchster Priorität 

an Mikrobiologie einsenden, mit schriftlicher Angabe „Malariaverdacht“. Eine ärztliche Kontaktadresse mit ganztägig erreichbarer Telefonnummer muss 

angegeben sein! 

alternativ: 

Wenn Mitarbeiter der ZNA, Station oder Ambulanz über die notwendige Fertigkeit und Erfahrung verfügen, wird zusätzlich die Abnahme von Kapillarblut und 

Anfertigung von dünnen Blutausstrichen und einem „Dicken Tropfen“ auf Station empfohlen. Transport der Präparate in bruchsicheren 

Objektträgerversandbehältern. 

1. Anfertigung des dünnen Blutausstriches 

Einen Tropfen Kapillarblut (Ohrläppchen oder Fingerbeere) auf einem Objektträger auffangen. Mit einem zweiten Objektträger setzt man in einem Winkel von 

etwa 45 Grad so an, dass sich das Blut an der Berührungslinie zwischen Objektträgerkante und Objektträgeroberfläche verteilt. Nun schiebt man den 

Objektträger unter Beibehaltung seiner Neigung gleichmäßig und ohne Druck über die Fläche des Objektträgers, so dass sich der nachziehende Tropfen darauf 

gleichmäßig und in dünner Schicht ausbreitet. Der Ausstrich sollte noch vor dem Ende des Objektträgers auslaufen. Lufttrocknen. Mit einem Filzstift auf dem 

Objektträger - außerhalb des Ausstrichs -Patientenidentifikationsdaten notieren. 

2. Anfertigung des "Dicken Tropfens" 

Einen Tropfen Kapillarblut auf einen Objekträger bringen und z.B. mit der Ecke eines zweiten Objektträgers auf ca. 1 cm 2 so verrühren, dass man gerade noch 

durchsehen kann. Lufttrocknen. Mit Filzstift auf dem Objektträger - außerhalb des Ausstrichs - Patientenidentifikationsdaten notieren. Versand mit höchster 

Priorität bei klinischem Verdacht auf Malaria; normale Priorität bei Untersuchungen zur Therapiekontrolle. 

Bitte vermerken Sie auf dem Einsendeschein vollständige anamnestische und klinische Angaben entsprechend dem folgenden Procedere: 

Vorgehen bei Malariaverdacht: 

Anamnestische Angaben 

Aufenthalt in Malariagebiet: Wo? Wann? Wie lange? Seit wann zurück? 

Klinik: Fieber: Seit wann? Rhythmus? Wie hoch? Wann zuletzt? 

Durchfälle? 

Bewußtseinseintrübung? 

Chemoprophylaxe: Womit? Seit wann? Wann zuletzt? 

Prophylaxe adäquat und korrekt durchgeführt? Durchfallepisoden? 

Spezifische Therapie: Bereits eingeleitet? Durch wen (Patient, Hausarzt, in der Klinik)? Womit?

Weitere detaillierte Hinweise können der aktuellen S1-Leitlinie der Deutschen Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (DTG) 

entnommen werden: http://www.awmf.org/leitlinien/detail/ll/042-001.html 

Vorgehen bei gesicherter Malaria: 

Zur Therapiekontrolle sind tägliche Untersuchungen bis zum Verschwinden der Plasmodien aus dem Blut durchzuführen. Bei wirksamer, adäquat 

durchgeführter Therapie ist dies nach ca. 2 Tagen der Fall. 

Verfahren: 

Qualitativer und quantitativer mikroskopischer Nachweis mit Speziesdifferenzierung (ggf. auch mittels spezifischer PCR), immunchromatographischer Nachweis 

von Plasmodienantigen (aus EDTA-Blut) 

Immer zwingend infektiologisches oder alternativ hämatologisches Konsil! Alle Patienten mit einer Parasitämie >5% müssen stationär auf einer IMC- 

oder Intensivstation behandelt werden. 

Vorgehen bei negativem Resultat und weiterbestehendem klinischen Verdacht: 

Untersuchung 12-stündlich über 2 Tage wiederholen! Während der Nachweis von Plasmodien im Blutausstrich und/oder Dicken Tropfen das Vorliegen einer 

Malaria sichert, schließt ein negatives Untersuchungsergebnis diese Erkrankung nicht aus. Zu Beginn einer Malaria können die Parasiten so spärlich verteilt 

sein, dass sie auch im Dicken Tropfen noch nicht nachgewiesen werden können. Bei anhaltender Symptomatik und weiter bestehendem Verdacht auf das 

Vorliegen einer Malaria muss der Plasmodien-Nachweis wiederholt werden. Dabei kann Blut unabhängig vom Fieberrhythmus abgenommen werden, da 

Plasmodien grundsätzlich jederzeit und nicht nur während des Fieberanstiegs nachweisbar sind. 

Ggf. Abnahme Serologie: 

Indirekter Immunfluoreszenztest (Fremdlabor) mit Antigenen von Plasmodium falciparum, P. vivax/ovale, P. malariae 

Keinesfalls geeignet zur Diagnostik einer floriden Malaria; dies geschieht ausschließlich durch mikroskopischen Direktnachweis der Parasiten in Blutausstrich 

und Dickem Tropfen!

14.1 Therapie der Malaria 1 

14.1.1 Unkomplizierte Malaria tropica aus Gebieten ohne Chloroquinresistenz oder M. tertiana bzw. quartana 

Nachbehandlung der Malaria tertiana über 14 Tage mit PRIMAQUIN 30 mg Base pro Tag. Hierfür vorab G6PD-Mangel ausschließen! 

Erreger Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiefrequenz 

P.falciparum, 

P. vivax/ovale, 

P. malariae 

1. Wahl Chloroquin 

4 x 250 mg p.o. 

2 x 250 mg 

2 x 250 mg 

2 x 250 mg 

initial 

nach 6 h 

nach 12 h 

nach 24 h 

14.1.2 Patienten mit unkomplizierter Malaria tropica aus Gebieten mit vorbeschriebener Chloroquinresistenz 

Erreger Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiefrequenz 

Plasmodium 

falciparum 

1. Wahl Mefloquin 3-2-1 Tbl. à 250 mg 0, 8, 16 h 

neuropsychiatrische 

Vorerkrankungen oder 

Rückkehr aus Südostasien 

(Mefloquin-Resistenz- 

Gebiete) 

Artemether/Lumefantrin 

oder 

Atovaquon/Proguanil 

14.1.3 Patienten mit komplizierter Malaria tropica 

je 4 Tbl. 

je 4 Tbl. 

0, 8, 24, 36, 48, 60 h 

Tag 1, 2, 3 

Erreger: Plasmodium falciparum Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 

Pat. hämodynamisch kompensiert, Patient orientiert 

und orale Flüssigkeitsaufnahme möglich: ZVD

15 Meningitis 1 

Vorgehen bei Verdacht auf ambulant erworbene bakterielle Meningitis 

Wichtige Punkte zum diagnostischen und therapeutischen Vorgehen bei ambulant erworbener Meningitis 

1. Ausschluss Hirndruck (dringliches neurologisches Konsil, bei nicht fulminantem Verlauf CCT nach o.g. Schema) 

2. Dexamethason: unmittelbar vor Erstgabe des Antibiotikums, 10 mg alle 6 Std. über 4 Tage, vorzeitiges Absetzen bei Ausschluss einer bakteriellen Meningitis, 

bei Meningokokken-Nachweis nicht empfohlen 

3. Liquorentnahme: mindestens 10 ml abnehmen für folgende Untersuchungen: 

1 ml für Zellzählung mit Differenzierung 

1-2 ml für Eiweiß, Glukose, evtl. Laktat 

2 ml in Blutkulturflaschen 

1 Referenz: http://www.dgn.org/images/stories/dgn/leitlinien/LL2008/ll08kap_037.pdf

mindestens 2 ml für Bakteriologie (Grampräparat, Kultur undAntigen-Schnelltest), Lagerung und Transport bei Raumtemperatur (nicht Kühlschrank), 

zusätzlich mindestens 1 ml, falls Pat. anbehandelt ist und PCR-Verfahren erforderlich sind 

2 ml im Kühlschrank asservieren (Virologie für PCR-Verfahren u.a.), + 1 Serum-Monovette. 

10 ml bei V.a. Tbc-Meningitis 

4. Aseptische Meningitis: Einsendung einer Stuhlprobe für Enterovirus-Nachweis (Virologie!); Serumantikörper auf Mumps, Enteroviren, FSME, HIV, Borrelien, 

Leptospiren, evtl. Cryptococcus neoformans (Antigen-Test im Liquor und Serum); zusätzliche Untersuchung des Liquors auf intrathekale Antikörperbildung (und 

gleichzeitige Einsendung von Serum und Liquor ins Zentrallabor zur Bestimmung IgG und Albumin) 

5. HNO-Konsil: dringlich, zur Focussuche (Mastoiditis? Sinusitis? Otitis?) 

6. Isolationsmaßnahmen: bei V.a. Meningokokken (gramneg. Kokken, Petechien, Kontakt zu Erkrankten), bis 24 h nach Therapiebeginn 

7. Therapiedauer: siehe Tabelle bzw. nach Klinik 

8. Erfolgskontrolle: Bei fehlender klinischer Besserung nach 2 Tagen: intrakranielle Komplikationen? inadäquate Antibiotikatherapie? 

9. Umgebungsprophylaxe: nur bei Meningokokken und ggf. bei H. influenzae, schnellstmöglicher Beginn bei engem Kontakt, siehe Kapitel Prophylaxe 

10. Meldepflicht: durch behandelnden Arzt, bei Verdacht / Bestätigung von Meningokokken, an das zuständige Gesundheitsamt, namentlich, innerhalb von 24 h 

15.1 Empirische initiale Therapie bei ambulant erworbener Meningitis 

Bei Verdacht auf Meningitis tuberculosa ist nach neurologischem bzw. infektiologischem Konsil eine tuberkulostatische Therapie über mind. 12 Monate 

durchzuführen. 


Meningokokken, 

Pneumokokken, 

Listerien, 



Staph. aureus 

HSV 1/2 

V.a. Meningokokken 2 

(Neisseria meningitidis) 

V.a. Pneumokokken 3 

1. Wahl 

bei V.a. 

Herpesvirusenzephalitis 

meist jüngere Erwachsene 

(Hinweise: mikroskopisch 

gramnegative Diplokokken, 

Petechien) 

meist ältere Personen, 

häufiger bei Alkoholikern 

(Hinweis: mikroskopisch 

grampositive Diplokokken) 

Ceftriaxon 1 

plus 

Ampicillin 

plus 

Aciclovir 




2 Wochen 

2-3 Wochen 

Ceftriaxon 1 2 x 2 g Kurzinfusion 10-14 d 

Ceftriaxon 1 2 x 2 g Kurzinfusion 2 Wochen 

1 Max. Tagesdosis Ceftriaxon 4 g 

2 Unverzüglich mikrobiologischen Bereitschaftsdienst informieren (persönliche ärztliche Anforderung außerhalb der Regelarbeitszeit notwendig)! 

3 Cave: bei V.a. Beta-Laktamase-bildende Pneumokokken zusätzlich Vancomycin


V.a. Listerien 

mikroskopisch 

gramnegative Stäbchen 

bei Immunsuppression, 

älteren Patienten, 

Alkoholikern 

(Hinweis: grampositive 

Stäbchen) 

Ceftriaxon 2 x 2 g Kurzinfusion 2 Wochen 

Ampicillin 

plus 

Gentamicin 



15.2 Nosokomial erworbene Meningitis 

Ätiologie und Pathogenese: V.a. nach neurochirurgischen Interventionen, Meningitiden nach Schädelhirntrauma, Shunt-Infektion 

Diagnostik: Liquorproben (obligat) an Mikrobiologie mit entsprechendem Hinweis versehen 

Neurochirurgisches Konsil zwingend erforderlich, keine Indikation für Dexamethason-Gabe! 

3 Wochen 


Staph. aureus (inkl. 

MRSA), 

Staph. epidermidis, 


1. Wahl 

Vancomycin 

plus 

Meropenem 

15.3 Hinweise zur Dosierung von Antibiotika bei bakterieller Meningitis 

Antibiotikum Dosierung 

Penicillin G (Penicillin) 4-6 x 5 Mio I.E. i.v. 

Ampicillin 4 x 5 g i.v. 

Flucloxacillin 4 x 2 g i.v. 

Cefotaxim 3 x 2-4 g i.v. 

Ceftazidim 3 x 2 g i.v. 

Ceftriaxon 1-2 x 2 g i.v. 

Meropenem 3 x 2 g i.v. 

Fosfomycin 3 x 5-8 g i.v. 

Rifampicin 1 x 600 mg i.v. 

Vancomycin 2 x 1 g i.v. 

Linezolid 2 x 600 mg i.v. 



5 d 

nach Klinik

16 Hals-Nasen-Ohren-Infektionen 

16.1 Angina Plaut-Vincent 

Bei leichtem Verlauf alleinige Lokaltherapie mit Chlorhexidin-Mundspüllösung (mindestens 3 x täglich) ausreichend. 

Diagnostik: Abstrich für mikroskopisches Direktpräparat 


Spirochäten, 

Fusobakterien 

1. Wahl Penicillin V 3 x 1,5 Mega p.o. 

Alternative Clindamycin 3 x 600 mg p.o. 

16.2 Diphtherie 

Meldepflicht! Stationäre Aufnahme, Isolierung 

Diagnostik: Material immer von der Unterseite der Pseudomembranen entnehmen 

zwingend erforderlich sind Direktpräparat, Kultur und Toxinnachweis 


Corynebacterium 

diphtheriae 

16.3 Epiglottitis acuta 

1. Wahl 


Penicillin-Allergie 

Bei Abszedierung ist eine chirurgische Therapie obligat 

Penicillin G 

plus 

Diphtherie-Antitoxin 

(bereits bei Verdacht) 


plus 

Diphtherie-Antitoxin 

3 x 10 Mio. I.E. Kurzinfusion 

50.000 I.E. i.v. über 1 h 


50.000 I.E. i.v. über 1 h 

7-10 d 

mindestens 14 d 




S. pyogenes, 


1. Wahl Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 2,2 g Kurzinfusion nach Klinik 

Alternative Ceftriaxon 1 x 2 g Kurzinfusion 

Oralisierung nach 4-7 d 

anstreben

16.4 Furunkel 

Primär chirurgische Behandlung (Inzision, Entleerung) erwägen, antiseptische Nachbehandlung 


S. aureus 

1. Wahl Flucloxacillin 4 x 2 g Kurzinfusion 

Alternative Clindamycin 3 x 600 mg Kurzinfusion 

16.5 Bakterielle Lymphadenitis colli (nicht virusassoziiert) 

CAVE: DD Lymphknotentuberkulose, atypische Mykobakteriosen – im Verdachtsfall immer histologische Sicherung der Diagnose 


Streptococcus pyogenes, 

Staphylococcus aureus 


Alternative 

16.6 Mundbodenphlegmone 

Primäre chirurgische Behandlung obligat 

Cefuroxim 

oder 

Moxifloxacin 


1 x 400 mg i.v./p.o. 




Anaerobier 

16.7 Otitis externa maligna (necroticans) 


7-14 d 

7-14 d 

1. Wahl Amoxicillin/Clavulansäure 3 x 2,2 g Kurzinfusion mindestens 5-7 d i.v. 

danach abh. von Klinik 


1 Woche p.o. 


Pseudomonas aeruginosa 1. Wahl 

Ceftazidim 

plus 

Ciprofloxacin 



mindestens 6 Wochen

16.8 Otitis media acuta 



Haemophilus influenzae, 

S. pyogenes, 

Moraxella catarrhalis, 

S. aureus 


Alternative Cefuroxim 3 x 1,5 g Kurzinfusion 

16.9 Otitis media chronica 

Primäre chirurgische Therapie empfohlen. Antibiotische Therapie möglichst gemäß Antibiogramm. 

7-10 d 

Oralisierung nach Klinik 


Pseudomonas aeruginosa, 


Proteus mirabilis, 


1. Wahl 

16.10 Perichondritis 

Ggf. antiseptische Lokalbehandlung 

Ciprofloxacin-Ohrentropfen 

plus 

Ciprofloxacin 

Lokaltherapie 

2 x 750 mg p.o. 

10-14 d 





Escherichia coli, 



selten Enterokokken 

16.11 Sialadenitis 


Eskalation Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 

Bei gesicherter Sialolithiasis chirurgische Behandlung erforderlich. CAVE: Virusassoziation DD Mumps 




Anaerobier 



7-14 d 

5-8 d 

Oralisierung nach Klinik

16.12 Mastoiditis 




S. pyogenes, 


S.aureus, 

Escherichia coli, 


selten Pseudomonas 

aeruginosa 

16.13 Sinusitis acuta purulenta 

1. Wahl Ceftriaxon 1 x 2 g Kurzinfusion 

Alternative Amoxicillin/Clavulansäure 1 3 x 2,2 g Kurzinfusion 

10-14 d 





S. aureus, 

S. pyogenes 

1. Wahl Amoxicillin/Clavulansäure 

3 x 1 g p.o. (KG >70 kg) 

2 x 1 g p.o. (KG 70 kg) 

2 x 1 g p.o. (KG < 70 kg) 

7-14 d 

bis 3 Wochen

16.15 Tonsillitis acuta 1 


Streptokokken Gr. A, 


S. aureus, 

verschiedene Viren 

16.16 Peritonsillarabszess 


1. Wahl Penicillin V 3 x 1,5 Mega p.o. 

Alternative Clindamycin 3 x 600 mg p.o. 


Streptokokken Gr. A, 

S. aureus, 


Anaerobier 

1. Wahl 

Cefuroxim 

plus 

Clindamycin 



16.17 Orbitalphlegmone 

Augenärztliches Konsil innerhalb von 24 h! Primäre chirurgische Therapie empfohlen. Antibiotische Therapie möglichst gemäß Antibiogramm. 


S. aureus, 





Anaerobier 

16.18 Zervikofaziale Aktinomykose 

1. Wahl Piperacillin/Tazobactam 3 x 4,5 g Kurzinfusion 

Eskalation Imipenem/Cilastatin 3 x 1 g Infusion über 2 h 

Chirurgische Therapie erwägen. Behandlung in der Regel langwierig. 


Actinomyces israelii 

(meist Mischinfektionen) 

1 CAVE: bei Mononukleose sind Aminopenicilline kontraindiziert 



7-10 d 

7-10 d 

14 d 

6 Wochen 

Oralisierung nach Klinik

17 Borreliose 

Die Diagnose wird anhand klinischer Kriterien gestellt, flankiert durch Laboruntersuchungen. Als serologischer Standard gelten Westernblot / Immunoblot (CAVE: Die 

Seroprävalenzrate in der deutschen Bevölkerung beträgt 8-25%, in der Mehrzahl der Fälle handelt es sich um bereits spontan folgenlos ausgeheilte Infektionen, die 

meist länger zurückliegen). Bei V.a. Neuroborreliose ist eine Liquoruntersuchung inkl. Bestimmung der intrathekalen Antikörpersynthese obligat. Direktnachweise 

mittels PCR oder Kultur aus Liquor, Gelenkpunktat und Biopsiematerial sind zu erwägen, jedoch muss auf eingeschränkte Sensitivität (je nach Ort der 

Matzerialgewinnung 10-70%) und Spezifität hingewiesen werden. 

Der sog. Lymphozyten-Transformationstest (LTT), Borrelien-Antigen-Tests im Liquor oder Urin oder die Typisierung von Lymphozyten-Subsets (CD57+/CD3-) sind 

nicht ausreichend validiert und besitzen in der Diagnostik keinen Stellenwert. Die direkte Untersuchung von Zecken auf Borrelienbefall ist ebenfalls nicht sinnvoll. 

Das Risiko für die Entwicklung einer klinisch manifesten Borreliose beträgt in Mitteldeutschland pro Zeckenstich ca. 1-5%. 

17.1 Frühstadium (Serologie oftmals noch negativ) 

Erythema migrans (EM), regionale Lymphadenopathie, konstitutionelle Symptome, selten Fazialisparese, isolierter AV-Block I° 


Borrelia garinii, 

B. burgdorferi sensu stricto, 

B. afzelii 

1. Wahl Doxycyclin 2 x 100 mg p.o. 

Alternative Amoxicillin 3 x 750 mg p.o. 

17.2 Disseminiertes Stadium, "Organ"-Stadium, Neuroborreliose 

Lymphozytäre Meningoradikulitis (seltener Meningitis, Enzephalitis), Lyme-Karditis (Tachyarrhythmie oder AV-Block >I°), Lymphadenosis cutis benigna 

(Lymphozytom) 


Borrelia garinii, 


B. afzelii 

17.3 Spätsyndrome 

Lyme-Arthritis, Acrodermatitis chronica atrophicans 

1. Wahl Ceftriaxon 1 x 2 g Kurzinfusion 21 d 


Borrelia afzelii, 


B. garinii 

1. Wahl Doxycyclin 2-3 x 100 mg p.o. 28 d 

21 d

18 Pilzinfektionen 

18.1 Candida-Infektionen 

Therapieindikation: 

Sorgfältige klinische Abwägung zwischen invasiver Infektion und nicht 

therapiebedürftiger Kolonisation mit Candida-Spezies erforderlich! 

Zwingende Indikationen für eine sofortige antimykotische Therapie sind: 

- positive Blutkultur 

- Nachweis in sonst sterilem Material (Ausnahme: Urin) 

- ≥ 3 positive Nachweise und vermutete Infektion 

Individualisierte Therapieentscheidung bei Candida-kolonisierten 

Patienten anhand von Risikofaktoren: 

- prolongierter ITS-Aufenthalt mit maschineller Beatmung 

- schwere Sepsis 

- Immundysregulation, iatrogene Immunsuppression (v.a. Steroide) 

- maligne Erkrankung, Zytostatika-Therapie 

- Neutropenie 

- Z.n. mehrfacher operativer Intervention, gastrointestinale Leckage 

- gesicherte multifokale Pilzkolonisation 

- totale parenterale Ernährung 

- Therapie mit Breitspektrumantibiotika 

Wichtige Therapieprinzipien: 

- Deeskalationstherapie bei Nachweis Fluconazol-sensibler Candida-Spezies (insbesondere C. albicans, C. parapsilosis, C. lusitaniae, C. tropicalis) 

- keine Kombination von Amphotericin B und Azol-Antimykotika 

- präemptive antimykotische Therapie bei hämatoonkologischen Pat. nur in Absprache mit zuständigem hämatoonkologischen Oberarzt 

Therapiekosten: 

Auf sorgfältige Kodierung der Therapie mit Echinocandinen, Voriconazol oder liposomalem Amphotericin B achten: Hohe Zusatzentgelte im DRG-System! 

Regelmäßige Überprüfung der laufenden Therapie hinsichtlich möglicher Deeskalationsstrategien (in erster Linie Einsatz von Fluconazol).

Krankheitsentität Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 

Mundsoor 1 Amphotericin B 4 x 1 ml Suspension (100 mg/ml) oral 7-10 d 

Soor-Ösophagitis Fluconazol 

Soor-Bronchitis 2 Fluconazol 

Candidämie 

- sofortiger Wechsel bzw. Entfernung aller 

Katheter und Gefäßzugänge, ggf. 

Portexplantation 

Tiefe invasive Organcandidose 

Candida-Zystitis/-Pyelonephritis 

- zunächst nur Wechsel des 

Blasenverweilkatheters, systemische Therapie 

erst bei fortgesetztem Nachweis einer 

symptomatischen Candidurie 

Caspofungin 3 

oder 

Anidulafungin 

Caspofungin 4 

oder 

Anidulafungin 

Fluconazol 5 

1. Tag 1 x 800 mg i.v./p.o. 

ab 2. Tag 1 x 400 mg p.o. 

1. Tag 1 x 800 mg i.v./p.o. 

ab 2. Tag 1 x 400 mg p.o. 

1. Tag 1 x 70 mg i.v. 

ab 2. Tag 70 kg 1 x 70 mg i.v. 

1. Tag 1 x 200 mg i.v. 

ab 2. Tag 1 x 100 mg i.v. 

1. Tag 1 x 70 mg i.v. 

ab 2. Tag 70 kg 1 x 70 mg i.v. 

1. Tag 1 x 200 mg i.v. 

ab 2. Tag 1 x 100 mg i.v. 

1. Tag 1 x 800 mg i.v./p.o. 

ab 2. Tag 1 x 400 mg p.o. 

7-10 d 

7-10 d 

Monitoring mittels 

Blutkulturen (zunächst 

täglich), 

Therapieende 

frühestens 10 Tage 

nach erster negativer 

Blutkultur 

4-6 Wochen, 

ggf. länger 

2-4 Wochen 

Candida-Vaginitis Clotrimazol-Vaginaltabletten 2 x 100 mg (vaginal via Applikator) 3 d 

Candida-Nachweis in respiratorischen 

Materialien (Trachealsekret, BAL) 

1 Bei V.a. zusätzliche Soorösophagitis endoskopische Abklärung mittels ÖGD 

2 Stets pneumologisches Konsil anfordern 



5 Alternative bei Azol-Resistenz: Amphotericin B 1 x 0,5 mg/kg KG i.v. 

Keine Therapieindikation

Candida-Endokarditis 

Caspofungin 2 

oder 

Anidulafungin 

Candida-Endophthalmitis 1 Fluconazol 2 

1 Augenärztliches Konsil binnen 12-24 h zwingend erforderlich 

2 Alternative bei Azol-Resistenz: Amphotericin B 1 x 0,5 mg/kg KG i.v. plus 5-Flucytosin 4 x 25 mg/kg KG i.v. 

1. Tag 1 x 70 mg i.v. 

ab 2. Tag 70 kg 1 x 70 mg i.v. 

1. Tag 1 x 200 mg i.v. 

ab 2. Tag 1 x 100 mg i.v. 

1. Tag 1 x 800 mg i.v./p.o. 

ab 2. Tag 1 x 400 mg p.o. 

Monitoring mittels 

Blutkulturen (zunächst 

täglich), 

Therapieende 

frühestens 10 Tage 

nach erster negativer BK 

4-6 Wochen

18.2 Invasive Aspergillose 

Bei V.a. invasive Aspergillose obligatorische Anforderung eines pneumologischen Konsils! Auf extrapulmonale Manifestationen achten (z.B. NNH, 

Cerebrum). 

Einteilung nach EORTC-Kriterien: 

Mögliche Aspergillose: Wirtsfaktoren (Neutropenie für >10 Tage, allogene PBSZT/KMT, prolongierte Kortikosteroid-Therapie >20 mg/d Prednison- 

Äquivalent für >3 Wochen), klinische Symptome (z.B. Fieber) und CT-morphologische Kriterien (Rundherde mit Halo-Zeichen, Luftsichelzeichen etc.) 

Wahrscheinliche Aspergillose: zusätzlich positiver Aspergillus-Nachweis mikroskopisch oder kulturell aus respiratorischem Material, oder indirekter 

Nachweis (Galaktomannan in Serum, BAL oder Liquor) 

Gesicherte Aspergillose: zusätzlich Aspergillus-Nachweis mikroskopisch, histologisch oder kulturell aus sterilem Material (z.B. Liquor oder Bioptat) 

Therapieabstufung Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 

Primärtherapie Voriconazol 1 

Eskalation 

(oder Primärtherapie bei vorangegangener 

Azol-Therapie) 

CT-Kontrolle nach 10 d: 

Größenzunahme oder neu aufgetretene Herde 

sind in der 1. Eskalation als 

Therapieversagen 3 zu deuten 

andere Therapieoptionen 5 

Caspofungin 4 

oder 

Anidulafungin 

Posaconazol 

oder 

Amphotericin B (liposomal) 

1. Tag 

2 x 400 mg p.o. oder 

2 x 6 mg/kg KG i.v. 

ab 2. Tag 

2 x 200 mg p.o. 2 oder 


1. Tag 1 x 70 mg i.v. 

ab 2. Tag 70 kg 1 x 70 mg i.v. 

1. Tag 1 x 200 mg i.v. 

ab 2. Tag 1 x 100 mg i.v. 

2 x 400 mg p.o. zu den Mahlzeiten 

1 x 3-5mg/kg KG i.v. über 2 h 

1 

Bei GFR

19 Infektionen in der Schwangerschaft 

19.1 Toxoplasmose in der Schwangerschaft 

Risiko: vorwiegend bei einer Erstinfektion in der Schwangerschaft (v.a. in der zweiten Schwangerschaftshälfte). 

Diagnostik: Serologie inklusive der Avidität (ggf. Probe über Mikrobiologie an Nationales Refenzzentrum). 

Bei jeder Erstinfektion in der Schwangerschaft mit nachgewiesener Infektion des Neugeborenen (d. h. Nachweis von Toxoplasma-IgM- 

Antikörpern): Therapie des Neugeborenen unabhängig von Symptomen (PYRIMETHAMIN 1 mg/kg KG jeden 2. Tag plus SULFADIAZIN 100 mg/kg 

KG täglich plus Folinsäure 5 mg jeden 2. Tag über 4 Wochen, anschließend SPIRAMYCIN 100 mg/kg KG täglich über 4 Wochen; diese alternierende 

Therapie möglichst für ein Jahr). Die durch PYRIMETHAMIN induzierte Knochenmarkssuppression wird durch Folinsäure 15 mg p.o. ( 3 x wöchentlich) 

reduziert. Im Falle allergischer Reaktionen auf SULFADIAZIN Gabe von SPIRAMYCIN als Kombinationspartner. 


Toxoplasma gondii 

Frühschwangerschaft 

bis 16. SSW 

ab 16. SSW 

19.2 Harnwegsinfektionen in der Schwangerschaft 

Therapie ist auch bei asymptomatischer Bakteriurie immer indiziert! 

Spiramycin 

dann Umstellung auf 

Regime ab 16. SSW 

Pyrimethamin 

plus 

Sulfadiazin 

plus 

Folinsäure 

3 x 1 g p.o. bis zur 16. SSW 

1. Tag 50 mg p.o., ab 2. Tag 25 mg 

p.o. 

4 x 1 g p.o. 

15 mg p.o. (3 x wöchentlich) 

4 Wochen (dann 4- 

Wochen-Zyklen 

alternierend mit 

Spiramycin bis zur 

Geburt) 


E. coli, 


Proteus spp., 


1. Wahl Cefuroxim 2 x 500 mg p.o. 7 Tage 

Alternative Fosfomycin 1 x 3 g oral einmalig

19.3 Hinweise zum Einsatz von Antibiotika in der Schwangerschaft 

Antibakterielle Substanzen Kat. Antimykotika Kat. Antivirale Substanzen Kat. 

Aminoglykoside D Amphotericin B B Aciclovir, Famciclovir, Valaciclovir B 

Beta-Laktame Fluconazol, Itraconazol, Flucytosin C Adefovir, Entecavir, Telbivudin C 

Penicilline, Cephalosporine B Caspofungin, Anidulafungin C Amantadin C 

Imipenem-Cilastatin C Posaconazol C Cidofovir, Foscarnet-Na C 

Meropenem, Doripenem B Voriconazol D Ganciclovir, Valganciclovir C 

Makrolide/Lincomycine Antiparasitäre Substanzen Interferone C 

Azithromycin, Erythromycin B Albendazol / Mebendazol C Ribavirin X 

Clarithromycin C Atovaquon / Proguanil C Oseltamivir C 

Clindamycin B Chloroquin, Mefloquin C Zanamivir B 

Fluorochinolone/Gyrasehemmer C Ivermectin, Pentamidin C Antiretrovirale Substanzen 

Tetrazykline, Tigecyclin D Praziquantel B FTC, ddI, TDF B 

Andere Chinin C 3TC, ZDV, ABC, d4T C 

Daptomycin B Antimykobakterielle Substanzen Efavirenz (EFV) D 

Fosfomycin B Ethambutol A Nevirapin (NVP) B 

Linezolid C Isoniazid, Pyrazinamid, Rifampicin C LPV/rtv, IDV, TPV, Fos-APV C 

Metronidazol B Streptomycin D ATV, DRV, SQV, NFV, RTV B 

Sulfonamide/Trimethoprim C Rifabutin B Enfuvirtide (T-20), Maraviroc B 

Vancomycin C Isentress C 

FDA Risikokategorien in der Schwangerschaft: 

A – Kein Risiko in Studien bei schwangeren Frauen 

B – Tierversuche ohne Risiko, aber beim Menschen unzureichend untersucht ODER Toxizität im Tierversuch, aber beim Menschen kein Risiko 

C – Toxizität im Tierversuch, Studien am Menschen unzureichend. Nutzen kann Risiko aufwiegen 

D – Hinweis auf Risiko beim Menschen, aber Nutzen kann überwiegen 

X – Fetale Anomalien beim Menschen, das Risiko überwiegt!

19.4 Ausgewählte Virusinfektionen mit Gefährdung des Kindes 


Herpes simplex Virus 

Varizella zoster Virus 

akute genitale HSV- 

Infektion sub partu 1 

VZV-Exposition 

während SSM I-III 2 

akute VZV- 

Erkrankung sub partu 

(7 d vor bis 7 d nach 

Entbindung) 

Aciclovir 3 x 10-15 mg/kg KG Kurzinfusion 5-7 Tage 

Varicellen-Immunglobulin 1 ml/kg KG i.v. (Varitect®) 

Behandlung des Neugeborenen: 

Varicellen-Immunglobulin 

plus 

Aciclovir 

1 ml/kg KG i.v. (Varitect®) 


am selben Tag bzw. so 

früh wie möglich 

innerhalb von 72 h 

nach Exposition 

1 Im Fall einer Primärinfektion bzw. bei ausgeprägten Effloreszenzen an Vagina/Introitus kurz vor dem Geburtstermin: evtl. primäre Schnittentbindung 

2 Antikörper-Titer unbekannt: Titerbestimmung (VZV-IgG-Ak) am selben Tag; Antikörper-Titer negativ und relevante Exposition (Aufenthalt mit infektiöser Person in 

einem Raum für mind. 1 Stunde, „face-to-face“-Kontakt, Haushaltskontakt): Varizellen-Immunglobulin so früh wie möglich innerhalb von 72 h nach Exposition 

3 Maximale Tagesdosis: 2500 mg

20 Vorgehen bei Beta-Laktam-Allergie in der Anamnese 

20.1 Klassifikation der allergischen Reaktionen auf Beta-Laktame 

Reaktion, die: 

1. nicht zum bekannten Wirkungsspektrum der Beta-Laktam-Antibiotika gehört, 

2. bei Reexposition wieder oder sogar verstärkt auftritt 

3. mit Befunden aus dem allergischen Formenkreis einhergeht 

Reaktion Zeit Klinik Maßnahmen 

sofort 

wenige Minuten bis 

zu 10 h 

verzögert >10 h 

selten 

variabel, meist erst 

nach Tagen 

Erythem oder Pruritus 

Urtikaria 

Angioödem 

Bronchokonstriktion 

Rhinitis 

Hypotonie � Schock 

Morbilliformes Exanthem 

Urtikaria-Arthralgie 

Serumkrankheit 

Hämolyse 

Lungeninfiltrate mit 

Eosinophilie 

Interstitielle Nephritis 

Granulozytopenie 

Thrombopenie 

Vaskulitis mit Fieber 

Arzneimittelind. SLE 

Sofortiges Absetzen des Beta-Laktams 

Adrenalin i.v. bei Schock/Reanimation 

Antihistaminika / Kortikosteroide i.v. (Wirkung nicht 

eindeutig belegt) 

Ggf. Intensivstation 

Sofortiges Absetzen des Beta-Laktams 

Absetzen des Beta-Laktams 

Ausschluss alternativer Ursachen

20.2 Epidemiologie und Mechanismus 

Mechanismus: 

Sofortreaktionen: Beta-Laktame und/oder ihre Abbauprodukte werden als Hapten an ein Carrierprotein gebunden, dagegen werden IgE-Antikörper 

gebildet, die bei Reexposition eine allergische Reaktion auslösen. 

Verzögerte und seltene Reaktionen: Der genaue immunologische Pathomechanismus ist noch ungeklärt, z.T. wohl durch T-Lymphozyten oder durch 

Immunkomplexe vermittelt. 

Epidemiologie: 

~ 10% der Bevölkerung haben eine Beta-Laktam-Allergie (mit unterschiedlicher Ausprägung) 

Kaum epidemiologische Daten zu semisynthetischen Penicillinen und Cephalosporinen 

Anaphylaxie bei Penicillin i.v./i.m.: 1 / 10.000 Dosen 

Anaphylaxie bei Cephalosporinen: nur Fallberichte 

Mortalität: ~ 1 / 32.000 Dosen Penicillin 

Höchste Inzidenz 20. - 50. LJ 

Kreuzallergien 

Bei anamnestischer Penicillin-Allergie: 

> 10% für Carbapeneme, genaue Inzidenz unklar 

~ 10% für Cephalosporine der 1. und 2. Generation 

~ 1-3% für Cephalosporine der 3. Generation 

Keine Kreuzallergenität für Monobactame (Aztreonam) bekannt 

Keine Angaben für nicht-Beta-Laktam Antibiotika 

Bei anamnestischer Cephalosporin-Allergie: 

Eher „niedrig“ für Cephalosporine mit anderer Seitenkette und Penicilline, genaue Inzidenz jedoch unbekannt 

Hauttestung 

Nur für Penicillin und seine Abbauprodukte gut etabliert 

Aktuell sind allerdings keine Testsubstanzen auf dem deutschen Markt 

Nur in speziellen Situationen mit unklarer Anamnese bei dringender Indikation für eine Therapie mit einem Beta-Laktam indiziert 

Der sog. RAST-Test für spezifischen IgE-Ak ist weniger sensitiv als die Hauttestung

20.3 Anamnese 

Welche Symptome? - genaue Erfragung der Hautreaktion 

Direktes Abfragen der anaphylaktischen (IgE-vermittelten) Symptome: Atemnot, Urtikaria, sofort aufgetretenes Hautjucken / Exanthem, Atemnot, 

Bewusstlosigkeit (Schock) 

Wie lange liegt die allergische Reaktion zurück? 

Möglichst genaue zeitliche Rekonstruktion der Reaktion 

Welches Antibiotikum wurde genau verabreicht? - ggf. Krankenakten anfordern 

Sind andere Allergien vorhanden? 

Wurde eine dermatologische Hauttestung (s.o.) für Penicillin durchgeführt? 

Welche alternativen Antibiotika wurden bisher gut vertragen? 

20.4 Alternative Antibiotikaauswahl (keine Beta-Laktame) 

Erstgabe unter kontinuierlicher ärztlicher Aufsicht (Arzt auf Station/Patient am Monitor), wenn anaphylaktische Reaktion auf ein Antibiotikum in 

Vorgeschichte 

Erstgabe ohne Einsatz einer Monitorüberwachung nur möglich, wenn anamnestisch eindeutig eine nicht-anaphylaktische Reaktion vorlag 

Respiratorische Infektion: Clarithromycin; Moxifloxacin 

Urogenitale Infektionen: (Cotrimoxazol); Ciprofloxacin 

Gallenwegsinfektionen Ciprofloxacin (+\- Metronidazol) 

Gastrointestinale Infektionen Ciprofloxacin + Metronidazol 

Weichteilinfektionen Clindamycin, Fosfomycin, Daptomycin, Tigecyclin, (Vancomycin) 

Endokarditis Vancomycin +/- Aminoglykosid 

Breite empirische Antibiotika-Gabe Ciprofloxacin + Vancomycin +/- Metronidazol 

Gramnegative Keime Aztreonam 

20.5 Alternative Beta-Laktam-Antibiotika 

Bei eindeutig nicht-anaphylaktischer Reaktion auf ein Penicillin können Cephalosporine der 3. Generation eingesetzt werden: 

- Erstgabe jedoch nur unter kontinuierlicher ärztlicher Aufsicht 

- (Arzt auf Station / Patient am Monitor / Notfallmedikation / Notfallkoffer bereit)

21 Multiresistente Erreger (MRSA, VRE, ESBL-Bildner, Stenotrophomonas) 

Für alle Patienten, die eine Infektion mit multiresistenten bakteriellen Erregern haben, sollte grundsätzlich ein infektiologisches Konsil veranlasst werden. 

Isolation: siehe Hygieneplan 

Prinzipiell muss unterschieden werden, ob eine Infektion oder lediglich eine Kolonisation mit dem entsprechenden Erreger vorliegt! 

21.1 Mögliche Antibiotikaauswahl bei Infektion mit multiresistenten Erregern (Antibiogramm beachten) 

MRSA (Methicillin-resistente Staphylococcus aureus) 

Doxycyclin, Rifampicin, Clindamycin, Cotrimoxazol, Vancomycin, Teicoplanin, Linezolid, 

Tigecyclin, Daptomycin 

VRE (Vancomycin-resistente Enterokokken) Linezolid, Tigecyclin, Daptomycin, Doxycyclin 

ESBL-positive Enterobakterien 

(extended spectrum β-lactamase) 

Stenotrophomonas maltophilia Cotrimoxazol, evtl. Fluorochinolone, Tigecyclin 

Acinetobacter baumannii Tigecyclin, Colistin 

Carbapeneme (Meropenem, Imipenem, Doripenem, Ertapenem), evtl. Ciprofloxacin, Tigecyclin

21.2 Merkblatt zum Umgang mit MRSA Patienten im Krankenhaus 

Erreger Methicillin resistenter Staphylococcus aureus 

Übertragung Schmierinfektion (Kontaktinfektion) 

Meldung Meldung an Hygienefachkraft 

Mikrobiologische 

Untersuchung 

Aufhebung der 

Schutzmaßnahmen 

Grundsätzlich für alle 

Desinfektionsmaßnahmen VAHgelistete 

Mittel verwenden 

bei Häufung mit epidemiologischem Zusammenhang 

(§ 6 Abs. 3 IfSG) an das zuständige Gesundheitsamt 

Labormeldung beim Nachweis im Blut oder Liquor (§ 7 IfSG) 

an das zuständige Gesundheitsamt 

Zielauftrag festlegen: 

Screening MRSA 

– Aufnahme mit bekannter MRSA-Anamnese 

– Patienten mit mehrmaligem KH-Aufenthalt > 12 

Monate 

– Aufnahme/Verlegung aus Rehaklinik, Pflegeheim mit 

bekannt hoher MRSA Prävalenz 

– Patienten mit chronischen Wunden 

– Patienten mit Aufenthalt > 6 Monate im Ausland 

– Patienten mit Wohnsitz im Ausland 

– Kontaktpatienten 

Kontrolle MRSA 

– nach Sanierung 

Screening- Abstrichorte 

Rachen-Nase, ggf. Wunden 

72 h nach Ende der gezielten Antibiotikabehandlung 

müssen 3 negative Abstriche an 3 aufeinander folgenden 

Tagen vorliegen (Rachen-Nasen-Abstriche und von allen 

positiven Entnahmestellen) 

Händehygiene – hygienische Händedesinfektion vor und nach jedem 

Patientenkontakt 

– generell nach dem Tragen von Einmalhandschuhen 

– nach Kontakt mit erregerhaltigem Material 

Isolierung Einzelzimmer mit separater Toilette, ggf. Nachtstuhl 

Schutzausrüstung 

Pflege-/Behandlungs- und 

Untersuchungsmaterialien 

Kohortenisolierung möglich (Sanierungsstand und Resistogramm 

beachten) 

Anlegen vor Betreten und Ablegen vor Verlassen des 

Isolierzimmers: Schutzkittel (z.B. Einwegschutzkittel), 

Einmalhandschuhe, Mund-Nasenschutz 

patientenbezogener Einsatz (z.B. von Blutdruckmanschette, 

Stethoskop und Thermometer)

Flächendesinfektion alle Kontaktflächen medizinischer Geräte sind nach dem 

Einsatz am Patienten zu desinfizieren, Wischdesinfektion 

(sattnass - nicht sprühen!) patientennaher Flächen, 

dazu Einmaltuch benutzen 

Produkt: Incidin plus 0,5% 1h Einwirkzeit 

Instrumentendesinfektion 

Trockenentsorgung im geschlossenen Behälter 

bevorzugt maschinelle Aufbereitung in der Zentralen 

Sterilgutversorgungsabteilung (ZSVA) 

manuelle Aufbereitung: 

Produkt: Sekusept plus 1,5% 1 h Einwirkzeit 

Geschirr im geschlossenen Transportwagen oder im Container zur 

zentralen Küche transportieren 

sofortige Entsorgung im Geschirrspüler (mindestens bei 

65°C) 

Waschschüsseln maschinelle Aufbereitung 

Tipp: im Steckbeckenspüler 



Steckbecken maschinelle Aufbereitung im Steckbeckenspüler 

Wäsche Wäsche im Patientenzimmer im Wäschesack als normale 

Krankenhauswäsche entsorgen, Transport im 

flüssigkeitsdichten Sack 

Abfallentsorgung 

im Patientenzimmer im geschlossenen Behältnis entsorgen 

(AS 180104 Abfallgruppe B) 

Schlussdesinfektion Produkt: Incidin plus 0,5% 1h Einwirkzeit 

Zur Schlußdesinfektion gehört dazu z.B.: 

– Bettenaufbereitung 

– Decken und Kissen der Wäscherei zuführen 

– angebrochene und ungeschützt gelagerte 

Verbrauchsmaterialien/ Medizinprodukte, die nicht zu 

desinfizieren sind, sind zu verwerfen 

- ggf. Gardinen/ Sichtschutz abnehmen 

Patientenakte (elektronisch) markieren für Wiederaufnahmen und zur 

zeitnahen Einleitung entsprechender Hygienemaßnahmen 

Besondere Maßnahmen 

Operative Eingriffe am Ende des OP- Programms 

Verlegung/ Entlassung 

Nach Möglichkeit erst Sanierung oder Behandlung, 

dann operative Eingriffe durchführen. 

Mitteilung: vorab telefonisch, schriftlich gemäß MRE – 

Überleitungsbogen (Therapie/ Sanierungsstatus) an 

weiterbehandelnde Einrichtungen

Transport des Patienten 

vor und nach dem Transport: Bettgiebel am Kopf- und 

Fußende wischdesinfizieren, Patienten mit frischen 

Bettlaken abdecken und möglichst bei nasopharyngealer 

Besiedlung Mund-Nasenschutz anlegen, Transportpersonal 

trägt bei engem Patientenkontakt Schutzkleidung 

Sanierung bei Besiedlung des Nasen-Rachenraumes: 

Nase: Mupirocinsalbe (wenn sensibel) 3x täglich 3- 5 Tage 

Aufklärung des Patienten zur 

Verhinderung der 

Rekolonisierung während der 

Sanierung 

bei Resistenz: Alternativpräparate (Apotheke) 

Rachen: Spülungen mit antiseptischer Lösung 

z.B. Chlorhexidin-Lösung 2% oder PVP-Jodlösung 3x 

täglich für 5 Tage 

wenn Ganzkörperwaschung, dann Verwendung von 

antiseptischer Waschlotion 

z.B. Octenidin Waschlotion 

Nach Möglichkeit erst Sanierung oder Behandlung, 

dann operative Eingriffe durchführen. 

siehe Informationsblatt für betroffene Patienten und 

Angehörige

21.3 Merkblatt zum Umgang mit ESBL- Patienten im Krankenhaus 

Erreger Enterobakterien (z.B. Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli) 

mit Resistenz gegen Betalaktam-Antibiotika, einschließlich 

Breitspektrum-Cephalosporine 

Übertragung vorwiegend Schmierinfektion (Kontaktinfektion) 



Untersuchung 

Aufhebung der 



Desinfektionsmaßnahmen 

VAH-gelistete Mittel 

verwenden 




Screening auf ESBL 

– Aufnahme mit bekannter ESBL-Anamnese 

– Patienten mit mehrmaligem KH-Aufenthalt > 12 Monate 

– Aufnahme/Verlegung aus Rehaklinik, Pflegeheim mit 

bekannt hoher ESBL Prävalenz 


– Patienten mit Aufenthalt > 6 Monate im Ausland 


– Kontaktpatienten: Kontrolle ESBL 

– nach erfolgter Therapie bei Infektion 

72 h nach Ende der gezielten Antibiotikabehandlung müssen 

im Abstand von 24 h 3 Abstriche entnommen werden 

(Stuhlprobe oder Rektalabstrich und Untersuchung aller 

vormals positiven Materialien) und mit negativem Ergebnis 

vorliegen 



– generell nach dem Tragen von Einmalhandschuhen 


Isolierung Einzelzimmer nur bei Besiedlung des Respirationstraktes, 

ansonsten Kontaktisolierung, separate Toilette erforderlich 




bei Einzelzimmerisolierung/ Kohorten Anlegen von 

Schutzausrüstung vor Betreten und Ablegen vor Verlassen 

des Isolierzimmers, Schutzausrüstung besteht aus: 

Schutzkittel (z.B. Einwegschutzkittel) und Einmalhandschuhen 

bei Kontaktisolierung bei direktem Patientenkontakt besteht 

Schutzausrüstung aus: 

Einmalschutzkittel und Einmalhandschuhen 

patientenbezogener Einsatz (z.B. von Blutdruckmanschette, 

Stethoskop und Thermometer)

Flächendesinfektion alle Kontaktflächen medizinischer Geräte sind nach dem 

Einsatz am Patienten zu desinfizieren, Wischdesinfektion 

(sattnass - nicht sprühen!) patientennaher Flächen, dazu 

Einmaltuch benutzen 


Instrumentendesinfektion 

Trockenentsorgung im geschlossenen Behälter, 

bevorzugt maschinelle Aufbereitung in der Zentralen 

Sterilgutversorgungsabteilung (ZSVA) 







sofortige Entsorgung im Geschirrspüler ( mindestens bei 65°C) 











Abstufung der Maßnahmen 

nach Art des antibiotikaresistenten 

Erregers und 

nach Risikobereich 

Patientenakte 


Einhaltung der Einwirkzeit 

Zur Schlußdesinfektion gehört z.B.: 




Verbrauchsmaterialien/ Medizinprodukte, die nicht zu 

desinfizieren sind, sind zu verwerfen 

– ggf. Gardinen/ Sichtschutz abnehmen 

Konsensusempfehlung von Baden-Württemberg: Umgang mit 

Patienten mit hochresistenten Enterobakterien inklusive ESBL- 

Bildnern: 

www.rki.de/infektionsschutz/krankenhaushygiene 

(elektronisch) markieren für Wiederaufnahmen und zur 

zeitnahen Einleitung entsprechender Hygienemaßnahmen 

Mitteilung: vorab telefonisch 

schriftlich gemäß MRE-Überleitungsbogen (Therapie/ 

Sanierungsstatus) an weiterbehandelnde Einrichtungen

21.4 Merkblatt Umgang mit VRE- Patienten im Krankenhaus 

Erreger Vancomycin resistente Enterokokken (VRE) bzw. 

Glycopeptid resistente Enterokokken (GRE) 

z.B. E. faecium und E. faecalis 

Übertragung vorwiegend Schmierinfektion (Kontaktinfektion) 



Untersuchung 

Aufhebung der 








Screening auf VRE 

– Aufnahme mit bekannter VRE -Anamnese 

– Patienten mit mehrmaligem KH-Aufenthalt > 12 

Monaten 

– Aufnahme/Verlegung aus Rehaklinik, 

Pflegeheim mit bekannt hoher VRE Prävalenz 


– Patienten mit Aufenthalt >6 Monate im Ausland 


– Kontaktpatienten 

– Kontrolle VRE 

– nach erfolgter Therapie bei Infektion 

1 Woche nach Ende der gezielten Antibiotikatherapie 

müssen jeweils 3 Proben im Abstand von 1 Woche 

entnommen werden (generell Stuhlprobe oder 

Rektalabstrich und Untersuchung aller vormals 

positiven Materialien) und mit negativem Ergebnis 

vorliegen, bei Kolonisierung mit VRE keine Sanierungsmaßnahmen 

und Kontrollabstriche 

Händehygiene – hygienische Händedesinfektion vor und nach 

jedem Patientenkontakt 

– generell nach dem Tragen von 

Einmalhandschuhen 


Isolierung Einzelzimmer mit separater Toilette, ggf. Nachtstuhl, 

Kohortenisolierung möglich 

Schutzausrüstung Anlegen vor Betreten und Ablegen vor Verlassen des 

Isolierzimmers, Schutzausrüstung besteht aus: 

Schutzkittel (z.B. Einwegschutzkittel), 

Einmalhandschuhe, 

Mund-Nasenschutz bei Besiedlung des 

Respirationstraktes



patientenbezogener Einsatz z.B. von 

Blutdruckmanschette, Stethoskop, Thermometer 

Flächendesinfektion alle Kontaktflächen medizinischer Geräte nach Einsatz 

am Patienten desinfizieren, Wischdesinfektion 

(sattnass- nicht sprühen!) patientennaher Flächen, 

Einmaltuch benutzen 


Instrumentendesinfektion Trockenentsorgung im geschlossenen Behälter 

bevorzugt maschinelle Aufbereitung in der in der 

Zentralen Sterilgutversorgungsabteilung (ZSVA) 



Geschirr im geschlossenen Transportwagen oder im Container 

zur zentralen Küche transportieren 

sofortige Entsorgung in den Geschirrspüler 

(mindestens bei 65°C) 






Wäsche Wäsche im Patientenzimmer im Wäschesack als 

normale Krankenhauswäsche entsorgen, Transport im 



im Patientenzimmer im geschlossenen Behältnis 

entsorgen 




Patientenakte 


Zur Schlussdesinfektion gehört z.B.: 




Verbrauchsmaterialien/ Medizinprodukte, die 

nicht zu desinfizieren sind, sind zu verwerfen 

– ggf. Gardinen/ Sichtschutz abnehmen 

(elektronisch) markieren für Wiederaufnahmen und 

Einleitung entsprechender Hygienemaßnahmen 

Mitteilung: vorab telefonisch 

Schriftlich gemäß MRE-Überleitungsbogen 

(Therapie/Sanierungsstatus) an weiterbehandelnde 

Einrichtungen

21.5 Merkblatt zum Umgang mit symptomatischen Clostridium difficile- 

Patienten im Krankenhaus 

Erreger 

Clostridium difficile 

das Bakterium verursacht eine schwere 

Durchfallerkrankung (CDAD - Clostridium difficile 

assoziierte Diarrhoe) 

Übertragung endogene Infektionen oder fäkal-orale Schmierinfektionen 



Untersuchung 

Aufhebung der 





Meldepflicht nach § 6 IfSG bei schwerer CDAD und bei 

epidemiologischer Häufung an das zuständige 

Gesundheitsamt 

Untersuchung der Stuhlprobe auf Clostridium difficile 

48 Stunden nach Ende der Symptomatik, davon 

unabhängig ist die Antibiotika-Therapie fortzuführen, 

mikrobiologische Nachkontrollen sind nicht angezeigt 



– generell nach dem Tragen von Einmallhandschuhen 


Besonderheit: anschließend zusätzliche 

Händewaschung (da alkoholische Desinfektionsmittel 

gegen Clostridium difficile- Sporen unwirksam sind) 

Isolierung Einzelzimmer mit separater Toilette, Kohortenisolierung 

möglich 




Anlegen vor Betreten und Ablegen vor Verlassen des 

Isolierzimmers, Schutzausrüstung besteht aus Schutzkittel 

(z.B. Einwegschutzkittel) und Einmalhandschuhen 

patientenbezogener Einsatz (z.B. von 

Blutdruckmanschette, Stethoskop und Thermometer) 

Flächendesinfektion alle Kontaktflächen medizinischer Geräte sind nach Einsatz 

am Patienten zu desinfizieren, Wischdesinfektion (sattnass: 

nicht sprühen!) patientennaher Flächen, dazu Einmaltuch 

und ein gegen Clostridium difficile wirkendes Desinfektionsmittel 

einsetzen 

Produkt: Dismozon pur 1,5% 2 h Einwirkzeit 

Instrumentendesinfektion maschinelle Aufbereitung in der Zentralen Sterilgutversorgungsabteilung 

(ZSVA), Trockenentsorgung im 

geschlossenen Behälter 


ein gegen Clostridium difficile wirkendes 

Desinfektionsmittel einsetzen




sofortige Entsorgung im Geschirrspüler (mindestens bei 

65°C) 





Desinfektionsmittel einsetzen 



Tipp: zur vollständigen Entfernung der Clostridiensporen 

Programm 2x hintereinander ablaufen lassen 





Schlussdesinfektion 




Desinfektionsmittel einsetzen 

Produkt: Dismozon pur 1,5% 2 h Einwirkzeit 


Zur Schlussdesinfektion gehört z.B. : 




Verbrauchsmaterialien/ Medizinprodukte, die nicht 

zu desinfizieren sind, sind zu verwerfen 

– ggf. Gardinen/ Sichtschutz abnehmen

Abschnitt II - Prophylaxe 

1 Endokarditisprophylaxe 

1.1 Risikopatienten 

Patienten mit Klappenersatz (mechanische und biologische Prothesen) oder rekonstruierten Klappen unter Verwendung alloprothetischen Materials 

Patienten mit Zustand nach Endokarditis 

Patienten mit angeborenen Herzfehlern 

- zyanotische Herzfehler 

- operierte Herzfehler mit Implantation von alloprothetischem Material 

Patienten mit Z.n. Herztransplantation, die eine kardiale Valvulopathie entwickeln 

1.2 Indikationen zur Endokarditisprophylaxe 1 

Zahnärztliche Eingriffe mit Blutungsrisiko 

Eingriffe in Mundhöhle und Pharynxregion 

1.3 Endokarditisprophylaxe 

Antibiotikagabe als Einzeldosis 30-60 Minuten vor dem Eingriff 

Häufige Erreger Kalkulierte Therapie Erwachsene Kinder 


Enterokokken, 


1. Wahl 

oral: Amoxicillin 

i.v.: Ampicillin 

1 Bei Risikokonstellation auf Ausstellung eines Herzpasses achten 

2 g p.o. 

2 g Kurzinfusion 

50 mg/kg KG p.o. 

50 mg/kg KG Kurzinfusion 

Alternative Clindamycin 600 mg p.o./Kurzinfusion 20 mg/kg KG p.o./Kurzinfusion

2 Perioperative Prophylaxe 

Bei der perioperativen Antibiotika-Prophylaxe handelt es sich in der Regel um eine kurzzeitige, meist einmalige Gabe eines Antibiotikums kurz vor, bei Beginn oder 

spätestens während des operativen Eingriffs (z.B. bei Auftreten von intraoperativen Komplikationen) zur Vermeidung von postoperativen Wundkomplikationen. Dies 

wird durch optimale Antibiotika-Wirkspiegel während der möglichen Kontamination des Operationsfeldes (d.h. Hautschnitt, Eröffnung des Gastrointestinaltraktes, 

Eröffnung einer Gelenkhöhle usw.) erreicht. Neben dem primären Ziel der Senkung der Wundinfektionsrate steht die Vermeidung lokaler und systemischer 

postoperativer Infektionskomplikationen im Fokus. 

Die Antibiotika-Prophylaxe kann evidenzbasierte Hygienemaßnahmen zur Prävention postoperativer Infektionen nicht ersetzen, sondern nur ergänzen. Sie ist als Teil 

eines Gesamtkonzepts der Infektionsprävention und der Krankenhaushygiene zu sehen. Eine Fortführung der perioperativen Prophylaxe über die Operationsdauer 

hinaus bedarf besonderer Empfehlungen. Diese werden ggf. im Abschnitt 1 dieses Leitfadens „Empirische antiinfektive Therapie“ für einige gezielte Indikationen 

gegeben. 

Die Antibiotikagabe sollte präoperativ 30-60 min vor dem Eingriff (spätestens intraoperativ) erfolgen. Die Wundinfektionsrate nimmt mit jeder Stunde nach dem 

Hautschnitt signifikant zu, wenn die Antibiotikagabe verzögert wird oder die Applikation länger als eine Stunde vor Operationsbeginn erfolgt. Eine Antibiotikagabe nach 

dem Wundverschluss hat keinen Einfluss auf die Wundinfektionsrate. 

Die Infusionsdauer sollte bei Cephalosporinen (z.B. Cefuroxim 1,5 g) 20 min., bei Clindamycin (max. 30 mg/min) 30 min. und bei Metronidazol 30 min. betragen. 

Eine intraoperative Wiederholung der Antibiotikagabe ist bei Blutverlust von über einem Liter oder bei länger dauernden Eingriffen nach einem Intervall, welches der 

ein- bis zweifachen Halbwertszeit der Substanz entspricht, indiziert. Damit werden die erforderlichen Wirkspiegel des Antibiotikums aufrechterhalten. Im Falle von 

Cefuroxim sollte die Wiederholung der Prophylaxe intraoperativ ca. 2-3 h nach Beginn des Eingriffs stattfinden. Metronidazol sollte nach 6-8 h erneut gegeben werden. 

Eine über die OP-Dauer fortgesetzte postoperative Gabe wird nicht empfohlen. Auch bei Implantaten ist keine Verlängerung der antibiotischen Prophylaxe notwendig. 

Die Anlage von Venen-, Arterien-, Blasenkathetern, Drainagen, passageren Schrittmachersystemen oder Liquorfisteln erfordern generell keine Antibiotikaprophylaxe. 

Wichtige Faktoren, die die Indikationsstellung, Substanzauswahl und etwaige postoperative Fortführung der Antibiotikagabe mitbestimmen, sind Eingriffsklassifikation 

(„sauber“, „sauber-kontaminiert“, „infiziert“), Eingriffsdauer, Immunsuppression, Verwendung von Fremdstoffen oder Metallen, Adipositas, Diabetes mellitus u.a. 

Es hat sich als zweckmäßig erwiesen, in den einzelnen Fachabteilungen eine regelmäßige Rotation der eingesetzten Antibiotikaklassen (z.B. Wechsel von 

Cephalosporinen, Breitspektrumpenicillinen, Fluorochinolonen und anaerob wirksamen Substanzen) vorzunehmen, um Erregerselektion und Resistenzbildung zu 

minimieren. Sinnvollerweise sollten diese Rotationen in Absprache mit dem klinischen Infektiologen, der Mikrobiologie und der Apotheke erfolgen. 

Risikopatienten bedürfen einer dem Einzelfall angepassten Prophylaxe, die unter Umständen auch einer Verwendung von Reserveantibiotika bedarf.

2.1 Indikationen zur perioperativen antibiotischen Prophylaxe 1 

Antibiotikagabe als Einzeldosis 30-60 min. vor dem Eingriff 

Leber-/Pankreas-/Ösophaguschirurgie 

Magenchirurgie 

Indikation Antibiotikaauswahl Dosierung 


oder 

Cefuroxim 

plus 

Metronidazol 


oder 

Cefuroxim 

einmalig 2,2 g Kurzinfusion 


einmalig 500 mg Kurzinfusion 



Gallenwegschirurgie Amoxicillin/Clavulansäure einmalig 2,2 g Kurzinfusion 

Kolon-/Rektum-Chirurgie 

Appendektomie 2 

Leisten- und Bauchwandchirurgie 2 

Interventionelle Gastroenterologie 

- PEG-Anlage 

Interventionelle Gastroenterologie 

- komplexe ERCP ohne adäquaten Galleabfluß 3 


oder 

Cefuroxim 

plus 

Metronidazol 


oder 

Ceftriaxon 





einmalig 1 g Kurzinfusion 

Amoxicillin/Clavulansäure einmalig 2,2 g Kurzinfusion 

Gefäßchirurgie Amoxicillin/Clavulansäure einmalig 2,2 g Kurzinfusion 

Neurochirurgie Amoxicillin/Clavulansäure einmalig 2,2 g Kurzinfusion 

Urologie 

- ohne Eröffnung von Darmsegmenten und ohne Hinweis auf Bakteriurie Cefuroxim einmalig 1,5 g Kurzinfusion 

1 

Substanzauswahl erfolgt nach Maßgabe des Operateurs auf Basis der weiter unten genannten Empfehlungen 

2 

Bei Vorliegen von Risikofaktoren 

3 

Bei Cholangitis: therapeutische Antibiotikagabe erforderlich

- endoskopische Eingriffe 

- transrektale Prostatabiopsie 

- ESWL 1 

Urologie 

- Eingriffe mit Eröffnung von Darmsegmenten 

Urologie 

- Prostatektomie 

- Nierentransplantation 

Cefuroxim 

plus 

Metronidazol 

Cefuroxim 




Herz-Thorax-Chirurgie Cefuroxim einmalig 1,5 g Kurzinfusion 

Gynäkologie 

- Hysterektomie 

Gynäkologie 

- Sectio caesarea 

Cefuroxim 

plus 

Metronidazol 


oder 

Cefuroxim 





Unfallchirurgie/ Orthopädie 

- Eingriffe mit einer Dauer >45 min. Cefuroxim einmalig 1,5 g Kurzinfusion 

Mund-Kiefer-Gesichtschirurgie Cefuroxim einmalig 1,5 g Kurzinfusion 

HNO-Heilkunde 

- Tonsillektomie 

- Tumoroperationen 

- plastische Rekonstruktionen 

Amoxicillin/Clavulansäure einmalig 2,2 g Kurzinfusion 

Operative Dermatologie 2 Cefuroxim einmalig 1,5 g Kurzinfusion 

1 Nur bei Vorliegen von Risikofaktoren 

2 Bei kleinen Eingriffen: Cefalexin 2 g oral 1-2 h vor OP alternativ möglich

3 Umgebungsprophylaxe bei Meningitis 

Bei Meningitis durch Meningokokken und H. influenzae ist eine sog. Umgebungsprophylaxe zu veranlassen: 

H. influenzae: Rifampicin 1 x 20 mg/kg KG (maximal 600 mg) für 4 Tage für alle Mitglieder eines Haushaltes, in dem ein ungeimpftes Kind 4 Stunden während der Woche vor Erkrankungsbeginn) 

sowie gegenüber dem Nasopharyngealsekret von Pat. Exponierten (Reanimation!); Neugeborene im 1. Lebensmonat: 2 x 5 mg/kg KG für 2 Tage. 

Alternativen: Levofloxacin 1 x 500 mg p.o. einmalig oder Ceftriaxon 250 mg als Einzeldosis i.m. (Schwangere, Erwachsene und Kinder ab 12 Jahren) bzw. Ceftriaxon 

125 mg als Einzeldosis i.m. (Kinder bis 12 Jahre). 

siehe auch: http://www.medizin.uni-halle.de/ihy/media/Merkblaetter/A.4.8%20Meningokokken%20Infektion.pdf

4 Prophylaxe nach Bissverletzungen (inkl. Rabies) 

Gründliche Wundinspektion, chirurgische Wundversorgung incl. Tetanusschutz, Indikation zur postexpositionellen Tollwutimpfung prüfen, Reinigung von 

Wunde und kontaminierten Hautstellen mit Seife und Wasser, Desinfektion mit 70% Alkohol oder jodhaltigem Präparat. 

Biss durch Tier oder Mensch 

Situation Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 

Klinische Infektionszeichen vorhanden 

(ggf. bei tiefer Wunde initiale Therapie i.v.) 


oder 

Doxycyclin 1 

oder 

Erythromycin 

4.1 Indikation zur postexpositionellen Tollwutimpfung 

2 x 1 g p.o. 

2 x 100 mg p.o. 

bis 4 x 1 g p.o. 

Deutschland gilt seit 2008 als tollwutfrei (im engeren Sinne frei von terrestrischer Tollwut bei Haus- und Wildtieren). Unabhängig davon gibt es in 

Deutschland noch die Fledermaustollwut. 

Hunde, Katzen, Füchse, Dachse, kleine Nagetiere, 

Hasen/Kaninchen, Nutztiere 

Tierbiss 2 Beurteilung des Tieres Indikation zur Tollwutimpfung 3 

Importierte Tiere, Fledermäuse, unklare Situation oder Tier 

nicht beobachtbar 

gesund/geimpft, 10 Tage beobachtbar 

bzw. aus tollwutfreiem Gebiet 

nicht adäquat möglich 

7 d 

In der Regel keine Impfung 

erforderlich; eventuell Untersuchung 

durch/Nachfrage beim Tierarzt oder 

Gesundheitsamt, Tier beobachten 

Impfindikation 

evtl. Nachfrage beim Tierarzt oder 

Gesundheitsamt 

1 

Bei Kontraindikation für Penicillin/Doxycyclin: Levofloxacin 1 x 500mg + Clindamycin 3 x 600mg 

2 

Inkl. Kratzwunden, Kontamination von Schleimhäuten mit Speichel (z.B. durch Lecken, Spritzer) und Kontamination von Schleimhäuten und frischen Hautverletzungen 

mit der Impfflüssigkeit eines beschädigten Impfstoffköders 

3 

Durchführung einer Simultanimpfung: Rabies-Immunglobulin (BERIRAB®) in einer Dosierung von 20 mg/kg KG zur Hälfte in die Umgebung der Wunde infiltrieren, zur 

anderen Hälfte i.m. (intragluteal) applizieren; gleichzeitig (neue Spritze) aktive Immunisierung mit Tollwutimpfstoff HDC® oder RABIPUR® (1 ml = 1 Impfdosis) 

beginnen (i.m.-Injektion in M.deltoideus; nicht intragluteal); Aktivimpfung fortführen an den Tagen 3, 7, 14, 28

5 Postexpositionsprophylaxe (HIV, Hepatitis B, Hepatitis C) 

siehe auch SOP „Verhalten bei Nadelstich-, Schnittverletzungen oder nach Schleimhautkontakt“: 

http://www.medizin.uni-halle.de/media/Intranet/Qualitaetsmanagement/2010/SOP%20Nadelstichverletzungen.pdf 

Start 

Nadelstich-, Schnittverletzung, SH-Kontakt 

mit potentiell infektiösen Körperflüssigkeiten 

Regeldienst 

-zeit 

7:00- 16:00 

Mitarbeiter 

3x Hep. B 

geimpft? 

Mitarbeiter 

nicht 

geimpft? 

nein 

nein 

ja 

ja 

ja 

umgehend 

Sprechstunde 

Betriebsarzt 

Blutentnahme : 

(1 Monovette) 

je 

1 x Mitarbeiter und 

1 x Patient 

Bestimmung: 

Anti HBs 

Anti HCV 

Anti HIV 1/2 

(siehe Anhang 2) 

1. Blutentnahme : 

(1 Monovette) 

je 

1 x Mitarbeiter und 

1 x Patient 

Bestimmung: 

HBs- AG 

Anti HBs 

Anti HBc 

Anti HCV 

Anti HIV 1/2 

2. Impfung 


Ende 

Aktive Hepatitis B 

Aktive Hepatitis C 

HIV-Infektion 

Antik./Titer 

≥100IE/l 

Antik./Titer 

≥ 10 bis 

< 100IE/l 

Antik./Titer 

< 10IE/l 

Sprechstunde 

Betriebsarzt 

Blutfluss 

durch Druck 

verstärken 

reichlich 

desinfizieren 

Betaisodona 

- Verband 

keine 

Immunisierung, 

wenn letzte Impfung 

5- 10 Jahre zurück 


aktive 

Immunisierung 

(ZNA) 


aktive und passive 

Immunisierung 

(ZNA) 


Ende 

Zwingend: 

Vorstellung in der 

Notaufnahme 

(ZNA) 

Sprechstunde 

Betriebsarzt 

Sprechstunde 

Betriebsarzt 

Sprechstunde 

Betriebsarzt 

Bei ärztlicher 

Indikation 

Einleitung einer 

HIV- 

Postexpositionsprophylaxe 

� 5.1 

Ende 

Ende 

Ende 

Sprechstunde 

Betriebsarzt 

Ende

Anhang 1 

Anti HBs- Wert 

Anhang 2 (Regelung der Verantwortlichkeiten) 

Blutentnahme: 

Erfolgreiche Gabe von: 

HB- Impfstoff HB- Immunglobulin 

≥100 IE/ l nein nein 

≥10 bis

5.1 HIV-Postexpositionsprophylaxe

Abschnitt III - Infektionen im Kindesalter 

Allgemeine Hinweise und Literaturbezüge für die Behandlung von Infektionen im Kindesalter 

„Infektionen bei Kindern und Jugendlichen“ Handbuch der Deutschen Gesellschaft für Pädiatrische Infektiologie (DGPI) 

Speziell für den Bereich der Neonatologie: „NEOFAX – Arzneimittelhandbuch für die Neonatologie“ 

SOPs der Kinderklinik bzw. des Institutes für Hygiene (inkl. Pflicht zur Meldung meldepflichtiger Infektionskrankheiten nach dem Infektionsschutzgesetz, interne 

Meldepflicht nosokomialer Infektionen über das ORBIS) 

1 Typische Infektionen im Kindesalter 

1.1 Angina tonsillaris / Scharlach 1,2 

Diagnostik: Rachenabstrich 


Streptococcus pyogenes 

1. Wahl Penicillin V 4 x 25.000 I.E./kg KG p.o. 3 

Alternativen 

Cefuroxim 

Erythromycin 

Clindamycin 

2 x 12,5 mg/kg KG p.o. 

2 x 20 mg/kg KG p.o. 


1 Prophylaxe bei asymptomatischen Patienten nur bei Kontakt zu Personen mit Z.n. rheumatischen Fieber oder Glomerulonephritis 

2 AWMF S-2 Leitlinie „Antibiotikatherapie der Infektionen an Kopf und Hals“ Nr. 017/066 beachten 

3 Maximale Tagesdosis für Penicillin V: 2 Mio I.E. 

7-10 d

1.2 Otitis media acuta 1 

CAVE: hohe Selbstheilungsrate 2 

Mikrobiologische Diagnostik: bei Parazentese immer Abstriche für Mikrobiologie asservieren, sonst nur bei Komplikationen, schweren 

Grunderkrankungen und Neugeborenen unbedingt durchführen 







1.3 Epiglottitis acuta 1 

1. Wahl Amoxicillin 3 x 25-30 mg/kg KG p.o. 

Alternativen 

Cefuroxim 2 x 12,5 mg/kg KG p.o. 

Erythromycin 2 x 20 mg/kg KG p.o. 

Stationäre Einweisung obligat. Inspektion nur in Intubationsbereitschaft. 

Mikrobiologische Diagnostik: Blutkultur, Abstrich von Epiglottis nur nach Intubation 






1. Wahl Cefotaxim 3 x 15-50 mg/kg KG i.v. 

Alternativen 

Cefuroxim 3 x 35 mg/kg KG i.v. 

Ampicillin/Sulbactam 3 x 50-100 mg/kg KG i.v. 

1 AWMF S-2 Leitlinie „Antibiotikatherapie der Infektionen an Kopf und Hals“ Nr. 017-066 beachten 

2 Antibiotische Therapie indiziert bei: akuter Otitis media in der ersten 6 Lebensmonaten; beidseitiger akuter Otitis media in den ersten 2 Lebensjahren; bei akuter Otitis 

media mit Otorrhoe und bei Vorliegen von Risikofaktoren 

7-10 d 

4-7 d

1.4 Harnwegsinfektionen 

Mikrobiologische Diagnostik: Kultur aus Mittelstrahl- bzw. Beutelurin, suprapubische Blasenpunktion nur nach RS, zusätzlich Blutkultur 

Parenterale Therapie: notwendig bei Säuglingen

1.6 Pneumonie – Neugeborene und Säuglinge

1.9 Parapneumonische Prozesse (Erguss, Empyem, Abszess) 



Staph.aureus, 



Anaerobier 

1.10 Aspirationspneumonie 

1. Wahl 

Alternative 

Cefuroxim 1 

evtl. plus 

Gentamicin 

Clindamycin 

plus 

Meropenem 


1 x 5 mg/kg KG i.v. (für max. 5 d) 



mind. 21 d 

(tägliche Reevaluierung 

der Therapie) 

Gentamicin max. 5 d 



Staph.aureus, 



Anaerobier 

1. Wahl Ampicillin/Sulbactam 3 x 50-100 mg/kg KG i.v. 7-14 d 

1.11 Nosokomiale Pneumonie 

Therapie richtet sich nach dem zu erwartenden Erregerspektrum der Abteilung 

1.12 Bakterielle Meningitis 2 

Wenn der klinische Zustand dies erlaubt, neben der Blutkultur auch Lumbalpunktion vor Therapiebeginn durchführen. 

Lebensalter Häufige Erreger Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 

Säuglinge ≤6 

Wochen 

Kinder >6 Wochen 

Streptokokken Gr. B, 

E.coli, 

Listerien, 


Pseudomonas spp., 

Klebsiella spp. 

Ampicillin 

plus 

Cefotaxim 


3 x 70 mg/kg KG i.v 

Meningokokken, 

Pneumokokken Ceftriaxon 1 x 60 mg/kg KG i.v. 7-10 d 

1 Alternativ Cefotaxim in gleicher Dosierung einsetzbar 

2 Vorgehen gemäß SOP der Kinderklinik, entsprechend Situation/Keimspektrum ist eine Anpassung der antiinfektiven Therapie vorzunehmen 

≥14 d

1.13 Sepsis 1 

Blutkultur vor Behandlungsbeginn obligat. Lumbalpunktion insbesondere bei Neugeborenen und Säuglingen immer großzügig erwägen. Fokussuche! 

Lebensalter Häufige Erreger Kalkulierte Therapie Dosierung Therapiedauer 

Neugeborene 

(early onset) 

Neugeborene (late onset)/ 

Säuglinge 6 Wochen 

Streptokokken Gr. B, 

E. coli, 

Listerien 

E. coli, 

Streptokokken Gr. B 


Pseudomonas spp., 


Enterokokken, 

Hämophilus spp., 

Samonellen 

Ampicillin 

plus 

Cefotaxim 

Cefotaxim 

plus 

Gentamicin 

Ampicillin 

plus 

Cefotaxim 




1 x 5 mg/kg KG (max. für 5 d) 


3 x 70 mg/kg KG i.v 

1 Vorgehen gemäß interner SOP der Kinderklinik, entsprechend Situation/Keimspektrum ist eine Anpassung der antiinfektiven Therapie vorzunehmen 

7-14 d 

7-10 d

2 Spezielle Infektionen im Kindesalter 

2.1 Herpes simplex Virus (HSV) - Infektion 

Diagnostik: 

Direktnachweis: Antigennachweis und Virusisolierung (Material in Virustransportmedium „Virocult“, alternativ trockener Abstrich in NaCl 0,9%) aus 

Abstrich und/oder Bläscheninhalt. 

PCR: Liquor bei V.a. HSV-Enzephalitis (hohe Sensitivität in den ersten 3 Tagen) und Abstrich bei V.a. Herpes genitalis vor Geburt 


Serologie: HSV1/2 IgG-, IgM-, IgA-Antikörper 

Bei V.a. neonatalen Herpes: Kultur aus Mund, Nasopharynx, Konjunktiven, Rektum, Urin, Stuhl, Blut, Bläscheninhalt und Liquor (zusätzlich PCR) 


Neugeborene 

(Herpes neonatorum) 

lokale Herpesvirusinfektion 

(Ekzema herpeticatum, 

schwerer Herpes labialis, 

schwere Gingivostomatitis) 

bei immunkompetenten Patienten 

lokale Herpesvirusinfektion 

bei immunsupprimierten Kindern 1 

Aciclovir 3 x 20 mg/kg KG i.v. 14-21 d 

Aciclovir 

Aciclovir 


und anschließend 

5 x 400 mg p.o. (>2 Jahre) 

5 x 200 mg p.o. (2 Jahre) 

5 x 200 mg p.o. (

2.2 Varizella zoster Virus (VZV)-Infektionen 1 

Diagnostik: 

Viruskultivierung, PCR: Material in Virustransportmedium 'Virocult', alternativ: trockener Abstrich in NaCl 0,9% 

PCR: Liquor bei V.a. Enzephalitis, BAL bei V.a. Pneumonie, Bläscheninhalt bei Immunsupprimierten 

Antikörper: VZV IgG-, IgM-, IgA-Antikörper 


V.a. konnatale Varizellen 

(Mutter innerhalb 5 Tagen vor bis 2 Tagen 

nach Geburt an Varizellen erkrankt) 

spätestens bei Krankheitszeichen zusätzlich 

Immunkompetente Kinder 

mit schwerem Zoster 

inkl. Zoster ophthalmicus 

Immunkompetente Kinder 

mit VZV-Enzephalitis 

VZV-Hyperimmunglobulin 

Aciclovir 

1 x 1 ml/kg KG i.v. 

oder 

1 x 0,5 ml/kg KG i.m. 


Aciclovir 3 x 15 mg/kg KG i.v. 7 d 

Aciclovir 3 x 20 mg/kg KG i.v. 14-21 d 

Immunsupprimierte Kinder mit Zoster Aciclovir 3 x 15 mg/kg KG i.v. 7-14 d 

Immunsupprimierte Kinder mit systemischer 

VZV-Infektion/Enzephalitis 

Aciclovir 3 x 20 mg/kg KG i.v. gemäß Klinik 

1 Grundsätzlich muss eine strenge Isolation des Patienten erfolgen. Bei immunsupprimierten Kindern erfolgt grundsätzlich eine stationäre intravenöse Behandlung in 

Rücksprache mit dem zuständigen Hintergrundoberarzt. Lokaltherapie adstringierend (ZnO-Emulsion) bzw. antiseptisch (Cold Cream mit Polihexanid 0,06% und Aqua 

30%), eventuell Antihistaminika bei starkem Juckreiz. Alternative zu Aciclovir insbesondere bei Immunsupprimierten und möglicher Resistenz: Foscarnet. 

7 d

2.3 Borreliose 1 


Erythema migrans, Lymphozytom, 

Lympadenopathie (Frühstadium) 

(a)

3 Infektionen bei immunsupprimierten Kindern 

Fieber in der Neutropenie (einmalige Körpertemperatur >38,5°C bzw. zweimalig Temperatur >38°C innerhalb von 12 h (kurzfristige Nachmessungen!)) ist 

eine dringliche Indikation zu einer prompten (innerhalb 1-2 h nach Auftreten des Fiebers) kalkulierten empirischen Therapie. 

In der Diagnostik obligat sind Blutkulturen (aus allen Hickman-/Broviak-Schenkeln bzw. aus dem Portsystem oder zentralvenösen Katheter, eine zeitgleiche 

Abnahme aus dem peripheren Blut ist nicht obligat!), Blutbild mit Differentialblut, CRP und eine Urinkultur. Weiterführende Diagnostik, einschl. Röntgen 

Thorax, Sono-Abdomen, Echokardiographie sowie mikrobiologische Untersuchungen erfolgen in Abhängigkeit von der Klinik. Grundsätzlich gilt, dass durch 

die diagnostischen Verfahren der Beginn der kalkulierten empirischen antimikrobiellen Therapie nicht verzögert werden darf; Zielstellung: Beginn der 

antimikrobiellen Therapie ca. 30 – 45 Minuten nach Eintreffen des Kindes auf der Station. Die Aufnahme der Kinder erfolgt direkt über die Kinderstation 1 in 

Rücksprache mit dem zuständigen pädiatrisch-onkologischen Hintergrundoberarzt! 

Risikogruppe Kalkulierte Therapie Dosierung 

Standardrisikopatienten 

(Patienten, die keine Kriterien der Komorbidität der 

Hochrisikogruppe erfüllen) 

Standardrisikopatienten mit speziellem Risiko, 

Hochdosis-Ara-C Therapie, 

Fieber im Zusammenhang mit Kathetermanipulationen, 

ausgeprägte Mucositis 

oder 

bei anhaltendem Fieber nach 24-48 h 

Bei anhaltendem Fieber nach 48-72 h 



plus 

Vancomycin 

bzw. 

Teicoplanin 

Meropenem 

plus 

Vancomycin 

bzw. 

Teicoplanin 


(max. Tagesdosis 3 x 4,5 g) 


(max. Tagesdosis 3 x 4,5 g) 


1.Tag: 2 x 10 mg/kg KG i.v. 

ab 2. Tag: 1 x 10 mg/kg KG i.v. 

(max. 400 mg als ED) 


(max. 1,0 g als ED) 




(max. 400 mg als ED)

Klinisch stabil, negative Blutkultur, 

aber weiterhin Fieber nach 72-96 Stunden: 

CT-Thorax empfohlen; Aspergillus- und Candida-Ag i.Serum 

Hochrisikopatienten mit Hinweis auf Sepsis bzw. SIRS: 

- Hypotension 

- Tachypnoe, Hypoxie (O2-Sätt. < 94% bei Raumluft) 

- Verlängerte Kapillarfüllzeit 

- graues Hautkolorit 

- Gerinnungsstörung 

4 Patienten mit Cystischer Fibrose (CF) 1 

zusätzlich 

liposomales Amphotericin B 

Meropenem 

plus 

Vancomycin 

bzw. 

Teicoplanin 

evtl. plus 

Gentamicin 

Mikrobiologische Diagnostik: Immer Versuch der Erregerisolierung, z.B. tiefer Rachenabstrich bzw. (induziertes) Sputum 



(max. 1,0 g als ED) 




(max. 400 mg als ED) 


(max. für 5 d, Talspiegel vor 3. Gabe) 


Keimspektrum des Patienten nicht bekannt / 

keine pulmonale Besiedlung mit 

opportunistischen Erregern 

(Pseudomonas aeruginosa, 

Burkholderia cepacia, MRSA, Aspergillus) 

Keimspektrum des Patienten / pulmonale 

Besiedlung bekannt 

Cefuroxim 


2 x 12,5 mg/kg KG p.o. 

nach Absprache mit 

behandelndem 

Spezialisten 

Antibiotische Therapie, Dosierung und Therapiedauer nach Absprache mit behandelndem Spezialisten 

1 Immer Rücksprache mit dem Hintergrundoberarzt und möglichst mit pädiatrischem Pneumologen anstreben. Pseudomonas aeruginosa-positive Patienten stehen 

immer unter antibiotischer Therapie unterschiedlicher Regime. Additive Behandlungen (Physiotherapie/ Inhalationen) beachten.

5 Perioperative Prophylaxe 

Bei hospitalisierten Kindern mit bevorstehender Operation muss die Prophylaxe an das individuelle und klinikspezifische Erregerspektrum sowie das 

individuelle Risikoprofil angepasst werden. Laufende Antibiotikaregime sollten wenn möglich nicht unbegründet geändert, ggf. erweitert werden. Eine 

weiterführende perioperative antibiotische Abschirmung sollte nur nach genauer Rücksprache mit dem Operateur erfolgen. 

Antibiotikagabe als Einzeldosis 30-60 min. vor dem Eingriff 

Indikation Antibiotikaauswahl Dosierung Dauer Anmerkung 

Abdominalchirurgie 

Häufig keine Prophylaxe 

notwendig 

Cefuroxim 

plus 

Metronidazol 


1 x 7,5 mg/kg KG i.v. 

Einmalgabe 30 min. vor OP 

bei OP Dauer > 30 min. 2. Gabe in 

identischer Dosis nach 3 Stunden 

Orthopädische Eingriffe Cefuroxim 1 x 30 mg/kg KG i.v. Einmalgabe 30 min. vor OP 

Neurochirurgische 

Eingriffe 1 

Cefuroxim 1 x 30 mg/kg KG i.v. Einmalgabe 30 min. vor OP 

HNO-ärztliche Eingriffe Cefuroxim 1 x 30 mg/kg KG i.v. Einmalgabe 30 min. vor OP 

Implantation von 

Broviac-Kathetern und 

Portsystemen 

Bei immunkompetenten 

Patienten keine 

Prophylaxe notwendig 

Urologische Operationen 

Häufig keine Prophylaxe 

notwendig 

Vancomycin 1 x 15 mg/kg KG i.v. Einmalgabe 30 min. vor OP 

Cefuroxim 

oder 

Ceftriaxon 



Einmalgabe 30 min. vor OP 

Indikation mit 

Kinderchirurgie 

abstimmen 


Orthopädie abstimmen 


Neurochirurgie 

abstimmen 

Indikation und 

eventuelle Fortführung 

der Antibiotikagabe mit 

HNO-Klinik abstimmen 



abstimmen 



abstimmen 

1 Sondersituationen Shuntimplantation und externe Ableitung beachten (Therapie und Prophylaxe gehen ineinander über, verlängerte Prophylaxe mit Cefuroxim plus 

Vancomycin nach Shuntimplantation erwägen)

Abschnitt IV - Arzneimittel 

1 Dosierungen bei Niereninsuffizienz 1 

Medikament 

HWZ 

[h] 

normal 

HWZ 

[h] 

Anurie 

Norm-Dosis GFR 30-50 ml/min GFR 10-30 ml/min GFR

Medikament 

HWZ 

[h] 

normal 

HWZ 

[h] 

Anurie 

Clarithromycin p.o. 6,8 17 2 x 250-500 mg p.o 

Norm-Dosis GFR 30-50 ml/min GFR 10-30 ml/min GFR 18 ml/min 

initial 400 mg 

1 x 200 mg 

Fluconazol p.o. 25 110 1 x 50- 400 mg p.o. 1 x 50-400 mg p.o. 

Ganciclovir 

Initialtherapie 

Ganciclovir 

Erhaltungstherapie 

Gentamicin 2 48 

Imipenem/Cilastatin 0,9 

4,2 30 2 x 5 mg/kg KG 

4,2 30 1 x 5 mg/kg KG 

2,9 

(13,3) 


3-6 mg/kg KG 

4 x 500 mg 

3 x 1 g 

2 x 2,5 mg/kg KG 

GFR 50-69 ml/min 





1 x 1,25 mg/kg KG 


4 x 1,5 g 



1 x 200 mg 

Tag 1-2 50-400 mg/d 

1 x 25-200 mg 

1 x 1,25 mg/kg KG 


1 x 0,625 mg/kg KG 


3 x 1 g 

GFR 0,5-2 ml/min 

1 x 400 mg 

nach Dialyse 

50% der Normdosis 

1 x 1,25 mg/kg KG 

nach Dialyse 

3 x Woche 

1 x 0,625 mg/kg KG 

nach Dialyse 

3 x Woche 

nach der Initialdosis individualisiert nach Spiegel (Ziel:

Medikament 

HWZ 

[h] 

normal 

HWZ 

[h] 

Anurie 

Norm-Dosis GFR 30-50 ml/min GFR 10-30 ml/min GFR

2 Tagestherapiekosten 

Wirkstoff Präparate Menge Preis 

Dosierung 

Tagestherapie- 

kosten 

Sulfonamide und Folsäureantagonisten 

Cotrim forte Tbl. 1 Tbl 0,06 € 

2 x 1 Tbl. 0,12 € 

Cotrimoxazol 

Cotrim Tbl. 

Cotrim K Sirup f. Kinder 

1 Tbl 

1 ml 

0,04 € 

0,01 € 

2 x 1 Tbl. 

2 x 1/2-2 ML = 5 ml 

0,08 € 

0,05 € 

Penicilline 

Cotrim Amp. SF 0,48 g 1 Amp 0,48 € 

2 x 2 Amp 0,96 € 

Benzylpenicillin 

InfectoCillin parenteral G1 Mega 

InfectoCillin parentera G 5 Mega 

InfectoCillin parentera G 10 Mega 

1 Amp 

1 Amp 

1 Amp 

1,52 € 

2,70 € 

4,15 € 

7,60 € 

1-5 Mio E 

13,50 € 

bis max 60 Mio. E 

24,90 € 

Phenoxymethyl- Infectocillin Tbl. 1 Tbl 0,05 € 

3 x 1 Tbl. 0,14 € 

penicillin Infectocillin Saft 1 ml 0,01 € bis 3 x 7,5 ml 0,29 € 

Benzylpenicillin- 

Benzathin 

Pendysin 1,2 Mio I.E. 1 Amp 13,10 € 

1,2 Mio I.E. 13,10 € 


Staphylex 1 g Amp. 

Staphylex 2 g Amp. 

Staphylex 250 mg Kps. 

Staphylex 500 mg Kps. 

1 g 

2 g 

250 mg 

500 mg 

1,41 € 

2,46 € 

0,46 € 

0,65 € 

3-4 x 1g 

3-4 x 0,25-1g 

4,23 € 

4,92 € 

1,38 € 

5,20 € 

Amoxicillin 

AmoxiHexal 1g Tbl. 

AmoxiHexal Saft 

1 g 

1 ml = 0,05 g 

0,07 € 

0,02 € 

3 x 1 g, max 6 g tgl. 

3 x 5 ml 

0,21 € 

0,36 € 

Amoclav 875/125 mg Filmtbl. 1 Tbl. 0,21 € 

2 x 1 Tbl. 0,42 € 

Amoxicillin + 

Clavulansäure 

Amoclav Trockensaft 

Amoxclav 1000/200 mg 

Amoxclav 2000/200 mg 

1 ml 

1,2 g 

2,2 g 

0,05 € 

1,17 € 

2,02 € 

bis 3 x 10 ml 

3 x 1,2-4,4 g 

1,50 € 

3,51 € 

6,06 € 

Amoxclav Hexal 500/100mg Amp 0,275 g 1,17 € 2 x 44 mg/kg KG 2,34 € 

Ampicillin Amp. 0,5 g 0,5 g 0,42 € 

1,26 € 

Ampicillin Ampicillin Amp. 1 g 1 g 0,60 € 

3 x 0,5-2 g 1,80 € 

Ampicillin Amp. 2 g 2 g 1,19 € 

3,57 € 

Ampicillin + 

Sulbactam 

Ampicillin Amp. 2 g 

Sulbactam 1 g Amp. 

2 g 

1 g 

1,19 € 

1,41 € 

3 x 2 g + 

3 x 1 g 

7,80 € 

Piperacillin 

Piperacillin 2 g 

Piperacillin 4 g 

2 g 

4 g 

1,16 € 

1,75 € 

3 x 2-4 g 

3,48 € 

5,25 € 

Piperacillin + 

Sulbactam 

Piperacillin 4 g + 

Sulbactam 1g Amp. 

4 g 

1 g 

1,75 € 

1,41 € 

3 x 4 g + 

3 x 1 g 

9,48 € 

Piperacillin + 

Tazobactam 

Piperacillin/Tazobactam 4/0,5g 4,5 g 3,43 € 

3 x 4,5 g 10,29 € 

Mezlocillin Baypen 2 g Amp. 2 g 2,67 € 

3 x 2-4 g 8,01 € 

Cephalosporine - Gruppe 1 

Cefalexin 

Cephalexin 500 Tbl. 

Cephalexin Tr.Saft 120 ml 

500 mg 

1 ml = 50 mg 

0,31 € 

0,03 € 

3-4 x 0,5-1 g 

2,48 € 

1,01 € 

Cefazolin Cephazolin Amp. 1 g 1 g 0,72 € 

3 x 1-2 g 

2,16 € 

4,32 € 

Cephalosporine - Gruppe 2 

Cefuroxim 750 mg p.i. 

Cefuroxim 1500 mg p.i. 

0,75 g 

1,5 g 

0,76 € 

1,00 € 

2-4 x 0,75-1,5 g 

1,52 € 

4,00 € 

Cefuroxim Cefuroxim 250 mg Ftbl. 

Cefuroxim 500 mg Ftbl. 

250 mg 

500 mg 

0,44 € 

0,58 € 

2 x 250-500 mg 

0,88 € 

1,16 € 

Cefuroxim Tr.Saft 100 ml 1 ml = 25 mg 0,05 € 

2 x 5 ml 0,45 € 

Cephalosporine - Gruppe 3a 

Ceftriaxon Ceftriaxon 0,5 g Amp. 0,5 g 1,05 € 

2,10 € 

Ceftriaxon 1 g Amp. 1 g 1,14 € 

1 x 1-4 g 1,14 € 

Ceftriaxon 2 g Amp. 2 g 1,40 € 

5,60 € 

Cefotaxim Cefotaxim 0,5 g Amp. 

Cefotaxim 1 g Amp. 

0,5 g 

1 g 

0,75 € 

1,49 € 

2 x 1-2 g 

3,00 € 

2,98 € 

Cefotaxim 2 g Amp. 2 g 1,81 € 

max. 12 g/d 10,86 € 

Ceftibuten Keimax 400mg Kps. S 400 mg 2,22 € 

1 x 400 mg 2,22 € 

Keimax 200mg Kps. S 200 mg 1,35 € 

1 x 400 mg 2,70 € 

Cephalosporine - Gruppe 3b 

Ceftazidim 

Fortum1 g 

Fortum 2g 

1 g 

2 g 

2,22 € 

2,80 € 

3 x 1-2 g 

6,66 € 

8,40 € 

Cefepim 

Maxipime 1 g Amp. 

Maxipime 2 g Amp. 

S 

S 

1 g 

2 g 

10,46 € 

22,13 € 

2-3 x 2 g 

2-3 x 2 g 

31,38 € 

66,39 €


Dosierung 

Carbapeneme 

Meropenem Meronem 

500 mg 

1000 mg 

4,57 € 

9,14 € 

3 x 0,5-2 g 

13,71 € 

54,84 € 

Imipenem + 

Cilastatin 

Imipenem/Cilastatin Hexal 

500/500mg 

1 g 4,14 € 

3-4 x 1 g 

12,42 € 

16,56 € 

Ertapenem Invanz S,D 1000 mg 42,20 € 

1 x 1 g 42,20 € 

Doripenem Doribax S 500 mg 26,57 € 

3 x 500 mg 79,71 € 

Aminoglykoside 

Refobacin 10 mg Amp. 10 mg 0,59 € 

Gentamicin Gentamicin 40 SF Amp. 40 mg 0,12 € 1 x 3-5 mg/kg KG 1,25 € 

Gentamicin 80 SF Amp. 80 mg 0,25 € 

Neomycin Neomycinsulfat Kapseln 250 mg 0,07 € 

4000 mg 1,12 € 

Amikacin 

Amikacin 250 mg IFL. 

Amikacin 500 mg IFL. 

250 mg 

500 mg 

8,16 € 

15,74 € 

1 x 15 mg/kg KG 31,48 € 

Paromomycin Humatin Kapseln S 250 mg 1,29 € 

4000 mg 20,64 € 

Tobramycin 

Tobra-Cell N 40 Amp. 

Tobra-Cell N 80 Amp. 

S 

S 

40 mg 

80 mg 

1,17 € 

1,28 € 

1 x 3-5 mg/kg KG 6,40 € 

TOBI Inhalat S 300 mg 56,67 € 

2 x 300 mg 113,34 € 

Chemotherapeutika gegen Anaerobier 

Clindamycin 300 mg Amp. 

Clindamycin 600 mg Amp. 

300 mg 

600 mg 

0,92 € 

1,33 € 

3-4 x 300-600 mg 

3,68 € 

5,32 € 

Clindamycin 

Clindamycin 150 mg Kps. 150 mg 0,12 € 

Clindamycin 300 mg Kps. 300 mg 0,18 € 

Clindamycin 600 mg FTA 600 mg 0,28 € 

3-4 x 150-300 mg 


kosten 

0,49 € 

0,73 € 

1,12 € 

Sobelin Granulat für 80 ml Lsg. 1 ml = 15 mg 0,12 € 

6,00 € 

Vagimid 250 mg Tbl. 250 mg 0,14 € 

2 x 250 mg 0,28 € 

Metronidazol 

Vagimid 500 mg Tbl. 

Vagimid Vaginaltbl. 

400 mg 

100 mg 

0,21 € 

0,22 € 

2 x 500 mg 

1 x 100 mg 

0,42 € 

0,22 € 

Tetracycline 

Metronidazol 500 mg i.v. 500 mg 0,53 € 

2 x 500 mg 1,06 € 

Doxycyclin 

Doxycyclin 100 SF Amp. 

Doxy-M 100 mg Tbl. 

100 mg 

100 mg 

0,82 € 

0,07 € 

1-2 x 100 mg 

1,64 € 

0,14 € 

Tigecyclin Tygacil S 50 mg 56,51 € 

initial 100 mg, 

113,02 € 

dann 2 x 50 mg 

Fluorochinolone 

Levofloxacin 

Tavanic 500 Tbl. 

Tavanic i.v. 500 mg IFL 

500 mg 

500 mg 

1,39 € 

37,57 € 

1-2 x 500 mg 

2,78 € 

75,14 € 

Ciprobay 500 Tbl. 500 mg 0,09 € 

2 x 500 mg 0,18 € 

Ciprofloxacin 

Ciprobay 5% Saft 

Ciprobay 200 Inflsg. 

Ciprobay 400 Inflsg. 

1 ml = 50 mg 

200 mg 

400 mg 

0,39 € 

1,50 € 

2,79 € 

2 x 15 ml 

2 x 200-400 mg 

11,70 € 

3,00 € 

5,58 € 

Moxifloxacin 

Makrolide 

Avalox 400 mg FTA 

Avalox 400 mg i.v. IFL 

400 mg 

400 mg 

3,34 € 

35,17 € 

1 x 400 mg 

3,34 € 

35,17 € 

Azithromycin Azithromycin 250mg Filmtbl. S 250 mg 0,72 € 2 x 250mg 1,44 € 

Infectomycin 200 Saft 1 ml = 40 mg 0,04 € 2 x 100-800 mg 1,60 € 

Erythromycin Eryhexal 500 mg Tbl. 500 mg 0,19 € 4 x 250-500 mg 0,76 € 

Erythromycin i.v. 1 g 1 g 2,52 € 

1-2 g 5,04 € 

Roxithromycin Roxithromycin 150 mg Tbl. 150 mg 0,21 € 

2 x 150 mg 0,42 € 

Klacid Uno 500 mg Tbl. 500 mg 0,93 € 

2 x 500 mg 1,86 € 

Clarithromycin Klacid i.v. 500 mg S 500 mg 10,35 € 

2 x 500 mg 20,70 € 

Klacid Saft 125 mg/5 ml 1 ml = 25mg 0,10 € 2 x 7,5mg/kg KG 2,00 € 

Glykopeptide 

Teicoplanin 

Targocid 200 Tr.subst. m. Lsgm. 

Targocid 400 Tr.subst. m. Lsgm. 

200 mg 

400 mg 

31,18 € 

59,78 € 

200-400 mg 

31,18 € 

59,78 € 

Vancomycin Vancocell 500 mg Amp. 500 mg 2,13 € 3-4 x 500 mg 8,52 € 

Oxazolidinone 

Linezolid 

Zyvoxid 600 mg Inf-Lsg. 

Zyvoxid 600 mg Tbl. 

S 

S 

600 mg 

600 mg 

69,16 € 

60,78 € 

2 x 600 mg 

138,32 € 

121,56 € 

andere Antibiotika 

Colistin Tbl. 0,5 Mio. E. 0,67 € 

4 x 3-4 Tbl. 10,72 € 

Colistin Colistin CF zur Inhalation Amp. 1 Mio. E. 12,66 € 2-3 x 0,5-2 Mio.E. 75,96 € 

Diaroent mono Tabletten 2 Mio. E. 1,15 € 3-4 x tgl. 1 Tbl. 4,60 € 

Fosfomycin Fosfomycin 1 g (Importware) S 1 g 7,44 € 

3 x 5-8 g 178,56 € 

Daptomycin 

Cubicin 350 mg 

Cubicin 500 mg 

S 

S 

350 mg 

500 mg 

100,43 € 

127,53 € 

4 mg/kg KG 

100,43 € 

127,53 €


Amphotericin B 

Nystatin 

Azole 

Amphotericin B 50 mg Amp. 50 mg 

Fluconazol 50 Kapseln 50 mg 0,62 € 

Fluconazol 200 Kapseln 200 mg 1,75 € 

Diflucan Saft 150 ml 1ml = 5 mg 0,31 € 

Fluconazol Fluconazol i.v. 100 mg 100 mg 2,48 € 

Fluconazol i.v. 200 mg 200 mg 3,04 € 

Fluconazol i.v. 400 mg 400 mg 3,55 € 

Fungata Kapseln 150 mg 6,15 € 

Sempera Kapseln 100 mg 100 mg 1,55 € 

Itraconazol Sempera Liquid 150 ml 1ml = 10 mg 0,42 € 

Sempera 10 mg/ml Inf-lsg. S 250 mg 88,33 € 

Voriconazol 

Vfend 200 mg Tabletten 

Vfend 200 mg i.v. Amp. 

S 

S 

200 mg 

200 mg 

38,21 € 

127,77 € 

Posaconazol Noxafil Susp. 105 ml S 1ml = 40mg 6,82 € 

Echinocandine 

Caspofungin 

Micafungin 

Sonstige Antimykotika 

45,33 € 

Ambisome 50 mg Amp. S 50 mg 96,99 € 

Nystatin Tbl. 0,5 Mio.I.E. 0,23 € 

Cancidas 50 mg S 50 mg 357,51 € 

Cancidas 70 mg S 70 mg 451,28 € 

Anidulafungin Ecalta 100mg S 100 mg 345,78 € 

Mycamine 50mg S, D 50 mg 150,09 € 

Mycamine 100mg S, D 100 mg 300,19 € 

Flucytosin Ancotil IFL 250 ml 2500 mg 49,27 € 

Dosierung 

0,5-0,7 mg/kg 

1-3 mg/kg 

3-4x0,5-1 Mio IE 


kosten 

45,33 € 

90,66 € 

96,99 € 

484,95 € 

0,68 € 

1,81 € 

1,24 € 

3,50 € 

12,40 € 

100 - 400 mg 

2,48 € 

3,04 € 

3,55 € 

1 x 150 mg 6,15 € 

6,20 € 

1-2x100 - 200 mg 

4,20 € 

1 - 2 x 200 mg 176,66 € 

2 x 200 mg 76,42 € 

2 x 4 mg/kg KG 255,54 € 

2 x 400 mg 136,40 € 

150 -200 mg/kg KG 

50 mg 357,51 € 

- 70 mg 451,28 € 

200 mg 691,56 € 

100 mg 345,78 € 

50 mg 150,09 € 

- 200 mg 600,38 € 

197,08 € 

246,35 € 

S - Präparat nur auf Sonderanforderung 

D - Durchläufer, d.h. Bestellung auf Nachfrage (i.R. 48h Lieferzeit) 

Preise incl. MwSt nach aktuellem Stand 09/2011. Preisänderungen sind jederzeit möglich. 

Hinweis: 

Berechnung der Tagestherapiekosten bei gebräuchlicher bzw. maximaler Dosierung. Tatsächliche Kosten können aus dem Preis je 

Menge x Dosierung errechnet werden bzw. durch Änderung der Eingabe des KG im gelben Feld.

3 Zubereitung und Verabreichung von parenteralen Antiinfektiva 

Wirkstoff/ Fertigarzneimittel Anwendung Zubereitung Haltbarkeit Hinweise 

Aciclovir 

Acic 250 mg, 500 mg 

Amikacin 

Amikacin Fresenius 

250, 500 mg 

Infusion über 

mind. 1 h 

Kurzinfusion 

Säuglinge: 1-2 h 

Kinder: 30-60 min 

Amoxicillin/Clavulansäure Infusion über 

Amoxclav Hexal i.v. 500/100 30-40 min 

mg, 1000/200 mg, 2000/200 mg i.v. Injektion 

Amp. 

Amphotericin B 

Amphotericin B DFL 50 mg 

Amphotericin B, liposomal 

AmBisome 50 mg Ampullen 

Ampicillin 

Ampicillin-ratiopharm 0,5 g, 1 g, 

2 g Inj. 



500/250 mg, 1000/500 mg 

Amp. Anidulafungin 

Ecalta 100 mg 

Aztreonam 

Azactam 2.0 g 

Benzylpenicillin-Benzathin 

Pendysin Amp. 1.2 Mio. I.E. 

Infusion: 

Individuelle Dauer 

0,1 mg pro kg/KG 

über 20-30 min 


30-60 min 


30-60 min 

Kurzinfusion über 

15-30 min 


90 min (100 mg) 

180 min (200 mg) 


20-60 min 

i.m. Injektion 

Stammlösung: lösen in 10 ml (20 ml für 500 mg) 

Aqua oder NaCl 0,9% 

Verdünnung: ad 100 ml (bis 500 mg) NaCl 0,9% 

bzw. ad 250 ml (ab 500 mg) NaCl 0,9% 

Verdünnung: 

12 h bei RT 

Nicht als Bolusinjektion verabreichen. 

Die Infusionslösung nicht im Kühlschrank aufbewahren. 

Inkompatibilitäten: mit sauren oder gepufferten 

Infusionslösungen 

fertige Infusionslösung sofort applizieren getrennte Applikation von anderen Arzneimitteln 

Inkompatibilitäten: mit Amphotericin B, Ampicillin, 

Erythromycin, Heparin,Vitamin B, Vitamin C 

Injektion: lösen des Pulvers in 10-20 ml Aqua 

Infusion: 

Stammlösung: lösen in 100 ml Aqua, NaCl 0,9% 

Verdünnung: mit Aqua, NaCl 0,9% oder 

Ringerlösung 

Stammlösung: Pulver mit 10 ml Aqua auflösen und 

kräftig schütteln 

Verdünnung: pro 1 ml Stammlösung mind. 50 ml 

G5% 

Stammlösung: in Aqua lösen, filtrieren mit 

beiliegendem 5 µm Filter 

Verdünnung: ad 100 ml bzw. ad 250 ml mit G5% 

Stammlösung: Pulver in Aqua lösen 

Verdünnung: ad 100 ml NaCl 0,9% oder G5% 

Stammlösung: in Aqua oder NaCl 0,9% lösen 

Verdünnung: ad 100 ml NaCl oder G5% 

Stammlösung: lösen mit 30 ml Aqua 

Verdünnung: mit 100 bzw. 200 ml NaCl 0,9% oder 

G5% verdünnen 

Stammlösung: 0,5 g Pulver mit mindestens 1,5 ml 

Aqua auflösen; 

Verdünnung: ad mind. 50 ml NaCl 0,9%, G5%, 

G10% oder Ringer 

i.m. Injektion: 1 g Wirkstoff mit 3 ml Aqua auflösen 

i.v. Injektion Pulver mit 5 ml des mitgelieferten Lösungsmittels 

vermischen 

sofort applizieren Inkompatibilitäten: getrennte Applikation von Aminosäure- 

Lösungen, Lipid-Emulsionen, Blut und Glucose-Lösungen 

sofort applizieren im Kühlschrank lagern 

Inkompatibilitäten: mit elektrolythaltigen 

Lösungsmitteln,getrennte Applikation von anderen 

Arzneimitteln 

max. 7 d im KS Inkompatibilitäten: mit NaCl, Elektrolyten und 

konservierungsmittelhaltigen LM 

sofort applizieren Inkompatibilitäten: mit Metronidazol, Aminoglykosiden, 

getrennte Applikation von anderen Arzneimitteln 

sofort applizieren Inkompatibilitäten: mit Eiweißhaltigen Lösungen, nicht 

mit Blutbestandteilen mischen 

SL: 24 h bei RT 

Verdünnung: 48 

Kompatibilitäten: Aqua, NaCl 0,9% oder G5% 

Inkompatibilitäten: Elektrolyte 

h bei RT 

SL 24 h bei RT Kompatibilitäten: Clindamycin-Phosphat, Gentamicin, 

Tobramycin, Cefazolin 

Inkompatibilitäten: Metronidazol, NaBi 

nach Applikation Infusionssystem durchspülen 

sofort applizieren keine Mischinjektion 

Achtung! bei Soja- oder Erdnussallergie


Benzylpenicillin-Natrium 

Infectocillin parenteral 1, 5, 10 

Mega 

Caspofungin 

Cancidas 50 mg 

Cefazolin 

Cephazolin Fresenius 1 g 

Ampullen 

Cefepim 

Maxipime 1 g, 2 g Ampullen 

Cefotaxim 

Cefotaxim-Fresenius 0,5g 

Cefotaxim-ratiopharm 1 g, 2 g 

Ceftazidim 

Fortum 1g, 2g 

Ceftriaxon 

Ceftriaxon-ratio. 0,5 g, 1 g, 2 g 

Cefuroxim 

Cefuroxim 750 mg, 1500 mg 

p.i. 

Cidofovir 

Vistide Infusionslösungskonz. 

5 ml 

Kurzinfusion über 

15-30 min 


Verdünnung: in 100 ml NaCl 0,9% oder G5% 

Infusion über 1 h Stammlösung: Pulver mit 10 ml Aqua auflösen 

Verdünnung: ad 100 ml bzw. 250 ml NaCl 0,9% 

Infusion über Stammlösung: in NaCl 0,9% oder G5% lösen 

30-120 min Verdünnung: mit 100 ml NaCl 0,9% bzw. G5% 

Kurzinfusion Stammlösung: Pulver mit Aqua auflösen 

Verdünnung: mit 100 ml NaCl 0,9% bzw. G5% 

Kurzinfusion, 


50-60 min (bei 2g) 


Verdünnung: in 50 ml (1g) bzw. 100 ml (2g) NaCl 

0,9% oder G5% 

Kurzinfusion Stammlösung: Pulver mit Aqua lösen 

Verdünnung: in 100 ml NaCl 0,9% bzw. G5% 

Kurzinfusion Stammlösung: in NaCl 0,9% oder G5% lösen 

Verdünnung: in 100 ml NaCl 0,9% bzw. G5% 


20-60 min 

Pulver in 50-100 ml Aqua, NaCl 0,9% oder G5% 

lösen 

6 h bei RT 1 Mio. I.E. Benzylpenicillin entspricht 598,9 mg = 1,7 

mmol Natrium 

Inkompatibilitäten: mit Vitamin-B-Komplex und 

Ascorbinsäure in gemeinsamer Lösung, mit 

Hydrogencarbonaten, Lactat 

24 h im KS Inkompatibilitäten: mit glucosehaltigen Lösungen, nicht 

mit anderen Medikamenten mischen 

Verdünnung: Keine intraarterielle Applikation 

24 h im KS 

24 h im KS vor Licht geschützt aufbewahren 

Inkompatibilität: mit Metronidazol, Vancomycin, 

Gentamicin, Tobramycin, Netilmicin und Aminophyllin 

Verdünnung: 

12 h bei RT 

Keine zu schnelle Injektion (weniger als 1 min) über einen 

ZVK, da Risiko schwerer Herzrhythmusstörungen besteht 

SL: 3 d im KS 

24 h bei RT Keine intraarterielle Injektion 

vor Licht geschützt aufbewahren 

Inkompatibilitäten: getrennte Applikation von 

Aminoglykosiden, Vancomycin 

Verdünnung: Inkompatibilitäten: Ceftriaxon und Calciumhaltige i.v. 

48 h im KS Lösungen, einschließlich Calcium-haltiger Lösungen zur 

bzw. 24 h bei RT intravenösen Ernährung dürfen nicht gemischt werden und 

sollten nicht gemeinsam verabreicht werden (auch nicht 

über unterschiedliche Infusionszugänge ); 

Ein zeitlicher Abstand von 48 h zwischen der Anwendung 

von Ceftriaxon und Calcium-haltigen i.v. Lösungen ist 

empfohlen 

24 h im KS Inkompatibilitäten: mit alkalischen Infusionslösungen 

(NaBi), Volumenersatzmittel aus vernetzten Polypeptiden, 


Infusion über 1h benötigte Dosis wird in 100 ml NaCl 0,9% verdünnt sofort applizieren mind. 1000 ml NaCl 0,9% vor der Gabe infundieren 

nicht mit anderen Arzneimitteln oder Lösungen verdünnen 

nicht über 30°C lagern; keine Kühllagerung


Ciprofloxacin 

Ciprobay 200, 400 Inflsg. 


Klacid i.v. 500 mg 

Clindamycin 

Clindamycin-ratiopharm 

300 mg/2ml, 600 mg/4ml Amp. 

Co-trimoxazol 

Cotrim ratiopharm 480 mg 

Ampullen SF 5ml 

Daptomycin 

Cubicin 350 mg, 500 mg IFL 

Doripenem 

Doribax 500 mg 

Doxycyclin 

Doxycyclin ratiopharm SF Amp 

Ertapenem 

Invanz 1 g 

Infusionslösungskonzentrat 

Ethambutol 

EMB-Fatol 1.0 Inj.-Fl. 


Staphylex 1 g, 2 g Ampullen 

Fluconazol 

Fluconazol 2mg/ml i.v. 

100 mg, 200 mg, 400 mg 

Flucytosin 

Ancotil Infusionslösung 250 ml 


30 min (200 mg) 

60 min (400 mg) 


30-60 min 

Kurzinfusion; 

Geschwindigkeit 

max. 30 mg/min 


30-60 min 


30 min 

fertige Infusionslösung 24 h bei RT vor Licht geschützt aufbewahren 

Kompatibilitäten: mit NaCl 0,9%, Ringer bzw. Ringer- 

Lactat Lösung, 5% oder 10% Glucoselösung 

Inkompatibilitäten: getrennte Applikation von Penicilline, 

Heparin-Lösungen 

Stammlösung: Pulver mit 10 ml Aqua auflösen 

Verdünnung: mit 250 ml NaCl 0,9% bzw. G5% 

die Lösung ist mit 50-100 ml NaCl 0,9% oder G5% 

auf maximal 12 mg/ml zu verdünnen 

Stammlösung: 

24 h bei RT 

Verdünnung: 

24 h im KS 

6 h bei RT 

Verdünnung 

24 h bei RT 

2 Amp. in 250 ml NaCl 0,9% oder G5% verdünnen Verdünnung 

24 h bei RT 

Stammlösung: in 7 ml (350 mg) oder in 10 ml 

(500 mg) mit Aqua oder NaCl 0,9% lösen (klare 

Flüssigkeit) 

Verdünnung: mit 100 ml NaCl 0,9% 

12 h bei RT 

24 h im KS 


Stammlösung nicht direkt applizieren 

Inkompatibilitäten: Nicht mit anderen Medikamenten 

mischen 

Injektionslösung vor Gebrauch immer verdünnen 

Inkompatibilitäten: Applikation folgender Stoffe muss 

getrennt erfolgen: Ampicillin, Phenytoin-Natrium, 

Barbiturate, Aminophyllin, Calciumgluconat und 

Magnesium 

Nicht unverdünnt verabreichen 

Inkompatibilitäten: getrennte Applikation von anderen 

Arzneimitteln 

Inkompatibilitäten: Glucose-haltige Lösungen 

CAVE: Lösen des Lyophylisats kann bis zu 15 min dauern 

Infusion über 1h Stammlösung: 10 ml Aqua oder NaCl 0,9% zum 

Pulver geben, schütteln (Suspension) 


24 h im KS 

Infusion über 1 h Amp. in 100 ml NaCl 0,9% bzw. G5% verdünnen sofort applizieren Inkompatibilitäten: Ringerlösungen 

Applikation getrennt von anderen Arzneimitteln 


30 min 

Stammlösung:: Pulver mit 10 ml Aqua oder NaCl 

0,9% lösen 

Verdünnung: mit 100 ml NaCl 0,9% 

Verdünnung: 

6 h bei RT oder 

24 h im KS 

Inkompatibilitäten: Glucose-haltige Lösungen 

nicht mit anderen Arzneimitteln mischen 

Infusion über 2 h verdünnen mit 500 ml NaCl 0,9% bzw. G5% 24 h im KS Sollte zusammen mit anderen Antituberkulosemitteln 

verabreicht werden 

Infusion über Stammlösung: Pulver in Aqua lösen 

sofort applizieren Inkompatibilitäten: Ringerlösungen 

30-120 min Verdünnung: mit 100 ml NaCl 0,9% bzw. G5% 

Nach Applikation können Schmerzen auftreten, deshalb 

auf ausreichende Verdünnung achten. 

Infusion über fertige Infusionslösung 24 h im KS Kompatibilitäten: G20%, Ringerlösungen, NaCl 0,9% 

30 min (max. 10 

ml/min) 

Viele Interaktionen mit anderen Arzneimitteln bekannt 


20-40 min 

fertige Infusionslösung sofort applizieren Inkompatibilitäten: getrennte Applikation von anderen 

Arzneimitteln 

CAVE: Knochenmarksdepression


Foscarnet 

Foscavir z. intravenösen 

Infusion 

Fosfomycin 

InfectoFos pro infusione 5 g 

Ganciclovir 

Cymeven Inj.-Lösg. 500 mg 

Gentamicin 

Gentamicin-ratiopharm 

40, 80 SF Amp. 

Refobacin 10 Ampullen 


Imipenem/Cilastatin Hexal 

500/500 mg 

Isoniazid 

Isozid 0.5 N Injektionsflaschen 

Levofloxacin 

Tavanic i.v. 250 mg, 500 mg 

Linezolid 

Zyvoxid 2mg/ml Inf.-Lsg. 

Meropenem 

Meronem 500 mg, 1000 mg 

Ampullen 

Metronidazol 

Metronidazol 500 mg 

Mezlocillin 

Baypen pro inj.2 g 

Micafungin 

Mycamine 50 mg, 100 mg 

Amp. 


1 h bei 60 mg/kg 

2 h bei 90 mg/kg 


30 min 


mind 1 h 


i.v. Injektion 

Kurzinfusion 


30-60 min 

bei peripherer Applikation unbedingt verdünnen mit 

NaCl 0,9% oder G5% (max. Konz.: 12 mg/ml) 

5 g: Substanz mit 100 ml Aqua lösen 

8 g: Substanz mit 200 ml Aqua lösen 

Stammlösung: Pulver mit Aqua auflösen 

Verdünnung: mit 50 ml NaCl 0,9% oder G5% 

(max. Konz.10 mg/ml) 

Infusionslösung: 

Amp. verdünnen mit 100 ml NaCl 0,9% 

Stammlösung: Pulver mit beiliegendem 

Lösungsmittel auflösen 


Infusion über 1 h Stammlösung: Pulver in Aqua lösen 

Verdünnung: mit 100-250 ml NaCl 0,9% oder G5% 


30 min (250 mg) 

60 min (500 mg) 

fertige Infusionslösung 

mischbar mit NaCl 0,9%, G5% 

24 h bei RT Inkompatibilitäten: mit Glucose-Lsg. ≥30%, Ringer- 

Acetat, Elektrolytlösungen mit zweiwertigen Kationen 

(Mg, Ca) 

12 h im KS nicht Die Substanz unter 8°C (Flasche) und über erwärmt 30°C lagern sich beim Lösen 

Nicht intrarteriell applizieren! 

Stammlösung: 

12 h bei RT 

Verdünnung: 

24 h im KS 

CMR-Substanz 

Inkompatibilitäten: parabenhaltige Lösungen 

24 h bei RT Inkompatibilitäten: ß-Lactamantibiotika (z.B. Penicillin 

oder Flucloxacillin) 


sofort applizieren Inkompatibilitäten: Laktate, Aminoglycosiden 

Verdünnung: 

24 h im KS 

Trockensubstanz vor Licht geschützt aufbewahren 

sofort applizieren vor Licht geschützt aufbewahren 

Inkompatibilitäten: keine gleichzeitige Gabe von 

Probenecid, Cimetidin; nicht mit Heparin oder alkalisch 

reagierenden Lösungen mischen 

Infusion über fertige Infusionslösung 

30-120 min 

sofort applizieren max. Behandlungsdauer beträgt 24 Tage 

Kurzinfusion Stammlösung: Pulver mit Aqua auflösen 

Verdünnung: Inkompatibilitäten: nicht gleichzeitig mit Probenecid 

Verdünnung: mit 100 ml NaCl 0,9% oder G5% 6 h bei RT applizieren 

verdünnen 

24 h im KS Kompatibilitäten: Aqua, NaCl 0,9%, G5%, G10% 

Kurzinfusion fertige Infusionslösung 24 h im KS Behandlungsdauer sollte nicht mehr als 10 Tage betragen 

Der Urin kann sich dunkel verfärben (ist ungefährlich) 


Infusion über Mischen des Pulvers im Verhältnis 1:10 mit NaCl Verdünnung: Inkompatibilitäten: Aminoglykoside, Tetracycline, 

30 min 

0,9% 

4 h bei RT Thiopental-Na, Procain 2 %, Suxamethoniumchlorid und 

(ca.5ml/min) (Bsp: 2 g mit 20 ml NaCl 0,9%) 

Noradrenalin 

Infusion über Stammlösung: mit 5 ml NaCl 0,9% oder G5% 24 h im KS Inkompatibilitäten: getrennte Applikation von anderen 

60 min 

Verdünnung: mit 100 ml NaCl 0,9% oder G5% Stammlösung: 

48 h bei RT 

Arzneimitteln 

Verdünnung: 

96 h bei RT


Moxifloxacin 

Avalox 400 mg Filmtabletten 

Avalox 400 mg i.v. 

Palivizumab 

Synagis 50 mg, 100 mg 

Piperacillin 

Piperacillin Fresenius 2 g, 4 g 



4 g/0,5 g i.v. 

Rifampicin 

Eremfat i.v. 600 mg 

Streptomycin 

Strepto-Fatol 1 g 

Sulbactam 

Sulbactam Hexal 1000 mg 

Amp. 

Teicoplanin 

Targocid 200, 400 Tr.subst. 

Tigecyclin 

Tygacil 50 mg Trockensubst. 

Ampullen 

Infusion über 1 h 

fertige Infusionslösung Nicht unter 15°C lagern! 


Arzneimitteln 

Kompatibilitäten: NaCl 0,9%, Glucoselösungen, 

Ringerlösung 

i.m. 1 ml Aqua langsam entlang der Innenwand der 

Flasche injizieren. Danach leicht schräg 30 sec. 

Schwenken. Dann ca. 20 min stehen lassen 


Kurzinfusion 


Kurzinfusion 

Stammlösung: (auch Inj.) Pulver mit Aqua lösen 

Verdünnung: mit NaCl 0,9% oder G5% 

Stammlösung: Lösen des Pulvers mit 20 ml Aqua 

oder NaCl 0,9% 

Verdünnung: mit mind. 50 ml NaCl 0,9%, G5% 

oder Aqua 

Infusion über 1-3 h Stammlösung: unter Schütteln in 5 ml Aqua oder 

in beigepacktem Lösungsmittel lösen 


i.m. 

Dauertropfinfusion 



Kurzinfusion 



Kurzinfusion 

Stammlösung: (auch i.m.) Lösen des Pulvers mit 4 

ml Aqua 

Verdünnung: in 1000 ml NaCl 0,9% 

Stammlösung: (auch Inj.) Pulver mit 4 ml Aqua 

oder NaCl 0,9% lösen 


Stammlösung: lösen in 20-50 ml NaCl 0,9% 

Verdünnung: mit NaCl 0,9%, Ringer; Ringer- 

Lactat, G5% 

Kurzinfusion Stammlösung: lyophilisierte Pulver mit 5,3 ml NaCl 

0,9% oder G5% lösen (beiliegende Spritze 

verwenden) 

Verdünnung: in 100 ml NaCl 0,9% und G5% 

3 h bei RT 

24 h im KS Inkompatibilitäten: nicht mit nicht-depolarisierenden 

Muskelrelaxantien verwenden 


Verdünnung: 

24h im KS 

Inkompatibilitäten: Ringer-Lactat, nicht mit anderen 

Arzneimitteln mischen (getrenntes Infusionsset) 

6h bei RT bräunlich-rötliche Verfärbung von Körperflüssigkeiten 

Keine Monotherapie 

"Flu-Syndrom" kann auftreten 

zahlreiche Interaktionen sind zu erwarten 

24 h bei RT und 

Lichtschutz 

Verdünnung: 

24 h im KS 

Verdünnung: 

24 h im KS 

Keine Bolusinjektion 

Kompatibilitäten: Mischinfusion mit Rifampicin möglich 

Inkompatibilitäten: mit Penicillin, Calciumgluconat, NaBi, 

Barbituraten, Nitrofurantoin, Heparin-Natrium, 

Procainhydrochlorid, Isoniazid und Riboflavin 

Inkompatibilitäten: Aminoglykoside; Metronidazol; 

Tetracycline, Thiopental-Na; Prednisolon; Procain 2 %; 

Suxamethoniumchlorid, Noradrenalin 

Kompatibilitäten: mischbar mit ß-Lactam-Antibiotika 

Schaumbildung bei der Herstellung vermeiden 

Inj.-Lösung kann auch oral verabreicht werden 

(200mg in 30 ml Aqua) 

sofort applizieren bei gleichzeitiger Anwendung von Antikoagulantien: 

Blutgerinnungsparamter überwachen 

Inkompatibilitäten: keine gleichzeitige intravenöse Gabe 

mit Amphotericin B, Amphotericin-B liposomal, 

Diazepam,Esomeprazol, Omeprazol


Tobramycin 

Gernebcin 40, 80 

(40 mg/ml) Amp. 

Vancomycin 

Vancocell 500 mg Ampullen 

Voriconazol 

Vfend 200 mg i.v. Ampullen 

Zidovudin 

Retrovir 10 mg/ml i.v. 

Kurzinfusion verdünnen mit 100 ml NaCl 0,9% bzw. G5% 24 h im KS Keine Bolusgabe 



mind. 1 h 


Verdünnung: in 100-250 ml NaCl 0,9% oder G5% 

Infusion über 1-2 h Stammlösung: Pulver mit 19ml Aqua lösen 

Verdünnung: in 100 ml 0,9% NacCl oder G5% 


mind. 1 h 

Amp. mischen mit G5% 

(Zielkonzentration 2-4 mg/ml) 

Verdünnung: 

24 h im KS 

Verdünnung: 

24 h im KS 

Drug Monitoring empfohlen 

Red-Neck-Syndrom kann während bzw. nach Infusion 

auftreten 


Arzneimitteln; nicht gleichzeitig mit Blutprodukten, 

parenteraler Ernährung, Kurzinfusionen konzentrierter 

Elektrolyt-Lösungen verabreichen. 

48 h bei RT Inkompatibilitäten: nicht mit anderen Arzneimitteln 

mischen 

Alle Angaben zur Haltbarkeit beziehen sich ausschließlich auf die physiko-chemische Haltbarkeit der hergestellten Lösungen und sind als Maximalwerte anzusehen.

Abschnitt V - Mikrobiologie 

1 Präanalytik-Bakteriologie 

1.1 Allgemeine Hinweise für mikrobiologische Untersuchungen 

Für eine zuverlässige mikrobiologische Untersuchung ist eine fachgerechte Durchführung von Entnahme, 

Lagerung und Transport der Proben erforderlich, da sonst die Erreger im Probenmaterial absterben und nicht mehr 

angezüchtet werden können. Außerdem wird ein verdrängendes Wachstum der Begleitflora verhindert. 

Daher ist Folgendes zu beachten: 

1. Die Probenentnahme sollte möglichst vor einer antibiotischen Therapie erfolgen und unter hygienisch 

einwandfreien Bedingungen durchgeführt werden. 

2. Die Proben sollen gezielt vom Ort der Infektion entnommen werden. 

3. Die Einsendung erfolgt in entsprechenden sterilen Versandgefäßen, ggf. mit Transportmedium. 

4. Jedes Probenröhrchen soll mit einem Patientenetikett bzw. Name, Vorname, Geburtsdatum des Patienten 

versehen sein. 

5. Bei Probenentnahme möglichst Kontamination mit körpereigener Flora vermeiden und Proben in 

ausreichender Menge gewinnen. 

6. Proben möglichst umgehend an das Labor weiterleiten. 

1.1.1 Lagerung von Untersuchungsmaterialien bis zum Transport ins Labor 

Material 

Kühlschrank Raumtemperatur Brutschrank 

Abstrich im Transportmedium + 

Trachealsekret + 

Bronchialsekret + 

Sputum + 

Blutkulturen + 

Liquor + 

Urin + 

Stuhl, pathogene Keime + 

1.1.2 Entnahme- / Transportsysteme 

Alle für die Mikrobiologie verwendeten Entnahme- und Transportsysteme können bei der Materialwirtschaft 

angefordert werden. 

Untersuchungen auf „ anaerobe Keime“ sind im Transportmedium (z.B. Port-a-Cul oder Amies-Medium) bzw. bei 

Punktaten auch in einer mit sterilem Stopfen verschlossenen Spritze einzusenden. 

Für den Nachweis von Gonokokken ein spezielles Transportmedium oder einen GO-Slide (Fa. Becton, Dickinson 

and Company) verwenden. 

1.1.3 Probenbegleitschein 

Auf dem Begleitschein sollen die Bezeichnung des Untersuchungsmaterials, der Entnahmeort, der 

Entnahmezeitpunkt, die Klinische Diagnose bzw. die Verdachtsdiagnose, Angaben zur antimikrobiellen Therapie, 

Grunderkrankungen und Umgebungs- und Reiseanamnese vermerkt sein. 

Dringlichkeitsvermerk „EILT“ oder „CITO“ auf dem Materialbegleitschein vermerken. 

1.1.4 Untersuchungsanforderungen 

Die Basisuntersuchung „allgemeine pathogene Keime und ggf. Antibiogramm“ beinhaltet: 

- die mikroskopische Untersuchung des Materials (sofern geeignet) 

- den kulturellen Nachweis aerober und ggf. anaerober Keime 

- sofern sich hierbei auch Pilze finden oder auf Grund der klinischen Angaben ein Verdacht hierauf besteht, 

werden sie in die Untersuchungen einbezogen 

- Prüfung auf antibakterielle Hemmstoffe (Urin) 

- Ermittlung der Keimzahl (Urine, Katheterspitzen) 

- die Identifizierung relevanter Keime 

- die Sensibilitätstestung relevanter Keime

Ausdrücklich anzufordernde spezielle Untersuchungen: 

Auf dem Untersuchungsantrag sind spezielle Untersuchungen gesondert zu kennzeichnen (z.B. 

Tuberkulose, Gonorrhoe , darmpathogene Erreger usw.) 

Erreger, die routinemäßig nicht kultiviert werden können (z.B. Malaria, Pneumocystis jiroveci), 

hier erfolgt der Nachweis mit anderen Methoden (z.B. Spezialfärbungen, Antigenteste) 

Molekularbiologische Erregernachweise (PCR) 

Nachforderungen von Untersuchungen aus bereits eingegangenen Proben 

- nur sinnvoll innerhalb von 24 Stunden nach Eingang der Probe, da sonst die Konstanz und Stabilität der 

mikrobiologischen Probe nicht mehr gewährleistet ist - 

2 Untersuchungsmaterialien 

2.1 Urin 

2.1.1 Mittelstrahlurin 

Die Gewinnung von Mittelstrahlurin gilt als Methode der Wahl für mikrobiologische Untersuchungen. Eine 

sachgerechte Entnahmetechnik ist zu gewährleisten und Kontaminationen durch die Umgebungsflora sind zu 

vermeiden. 

Vorzugsweise ist Morgenurin einzusenden, wobei die letzte Miktion 3 - 4 Stunden zurückliegen sollte. 

Gewinnung von Mittelstrahlurin beim Mann 

Vorhaut zurückziehen, Glans penis mit einem in sterilem Wasser getränktem Wattebausch reinigen. Mit einem 

trockenen Tupfer das Orificium urethrae trocknen. Das erste Drittel des Urins verwerfen und von der 

nachfolgenden Urinportion 10 - 20 ml Urin in einem Probenbecher auffangen. Davon 5 - 10 ml in einem sterilen 

Probenröhrchen einsenden. 

Gewinnung von Mittelstrahlurin bei der Frau 

Spreizen der Schamlippen. Äußeren Geschlechtsbereich mit einem in sterilem Wasser getränkten Tupfer von vorn 

nach hinten abwischen. Mit weiterem Tupfer trocken tupfen. Das erste Drittel des Urinvolumens verwerfen und die 

nachfolgende Urinportion in einem Probenbecher auffangen. Davon 5 – 10 ml in einem sterilen Probenröhrchen 

einsenden. 

2.1.2 Katheterurin 

Strenge Indikation wegen der Gefahr der Keimeinschleppung beachten. 

Reinigungsvorgänge wie bei der Gewinnung des Mittelstrahlurins durchführen. Katheter in die Urethra einführen 

und den aus dem Katheter ablaufenden Urin in einem sterilen Röhrchen auffangen. 

Wenn ein Dauerkatheter liegt, dann ca. 5 - 10 ml Urin direkt aus dem proximalen Abschnitt des (zuvor 

desinfizierten) Urinableitungssystems, nicht aus dem Auffangbeutel entnehmen. 

2.1.3 Blasenpunktionsurin 

Da eine gefüllte Blase Voraussetzung für die Punktion ist, ist zuerst der Füllungszustand sonographisch zu 

beurteilen. 

Nach der Rasur Punktionsbereich desinfizieren. 5 - 10 ml des so gewonnenen Urins in einem sterilen Röhrchen 

einsenden. 

Punktionsurin unbedingt auf dem Einsendeschein vermerken, da hier jede Keimzahl als diagnostisch signifikant 

anzusehen ist. 

2.2 Liquor 

Liquor nur über aseptische Lumbalpunktion gewinnen. Für den Bakteriennachweis (mikroskopische Präparate, 

Kultur sowie Antigenschnelltest) sind mindestens 1 - 2 ml Liquor erforderlich. 

Die Einsendung des Liquors in einem Transportmedium ist ungeeignet. 

Zusätzlich kann ein Teil des Liquors auch in eine Blutkulturflasche eingebracht werden. 

Für den Nachweis von Pilzen und Mykobakterien sind 2 - 10 ml Liquor erforderlich. 

Proben sofort in das mikrobiologische Labor weiterleiten. Ist das nicht möglich, die Probe bei Raumtemperatur oder 

im Brutschrank lagern. Niemals kühlen, da empfindliche Erreger absterben können. 

Hinweis: Bei Vorliegen eines septischen Krankheitsbildes empfiehlt sich die zusätzliche Einsendung von 

Blutkulturen. 

Probe telefonisch ankündigen 

Der Antigenschnelltest erfasst folgende Erreger: 

- Neisseria meningitidis Typen A, B, C, Y, W135 

- Haemophilus influenzae Typ b 

- Streptococcus pneumoniae

- Streptokokken Gruppe B 

- E. coli Typ K1 

2.3 Blutkulturen 

Die Anlage von Blutkulturen umfasst die Entnahme von Venenblut und die Verimpfung in entsprechende 

Kulturmedien (Blutkulturflaschen) für die mikrobiologische Diagnostik. 

Indikationen: 

- Unklares Fieber 

- Verdacht auf Sepsis 

- Verdacht auf Endokarditis 

- Verdacht auf systemische Beteiligung bei einer lokalisierten Infektion 

(z.B. Meningitis, Osteomyelitis) 

- Katheterassoziierte Infektionen 

- Verdacht auf zyklische Infektionskrankheiten 

Entnahmezeitpunkt : 

- Entnahme möglichst vor Beginn der Antibiotikatherapie 

- Entnahme möglichst im frühen Stadium des Fieberanstiegs bzw. unmittelbar beim Auftreten klinischer 

Symptome 

- In rascher Folge möglichst zwei Blutkulturpaare (1 Paar = eine aerobe und eine anaerobe Flasche) aus 

verschiedenen Entnahmeorten 

- Entnahme bei Verdacht auf Endokarditis – mehrere Blutkulturen zu verschiedenen Zeiten 

Entnahmeort: 

- Blutentnahme aus peripheren Venen 

- Blutentnahme aus Arterien, zeigen jedoch keine Vorteile 

- Keine Blutentnahme aus ZVK, peripher venösen Kathetern und Portsystemen; Entnahmen aus 

Portsystemen sind nur zum Nachweis katheterassoziierter Infektionen geeignet 

Anzahl der Blutkulturen: Die wiederholte Abnahme mehrerer Blutkulturen (2 – 3 / Tag) erhöht die 

Wahrscheinlichkeit eines positiven Keimnachweises erheblich. 

Durchführung: 

- Blutkulturflaschen (aerob und anaerob) vor dem Beimpfen auf Raumtemperatur bringen 

- Blutkulturflaschen beschriften; Name des Patienten, Datum und Uhrzeit der Blutentnahme 

- Flaschenbarcode nicht überkleben oder abreißen (siehe Arbeitsanleitung) 

- Kunststoffschutzkappe der Flasche entfernen 

- Durchstichstopfen mit Desinfektionsmittel desinfizieren 

- Sorgfältige Hautdesinfektion der Punktionsstelle am Patienten 

- Zuerst aerobe Flasche beimpfen, um Eintritt von Luft aus der Spritze in anaerobe Flasche zu vermeiden, 

dann anaerobe Flasche beimpfen 

- Bei Erwachsenen wird ein Blutvolumen von 5 - 10 ml Blut pro Flasche empfohlen 

- Bei Neugeborenen und Kleinkindern wird ein Volumen von 0,5 - 4 ml für die pädiatrische Flasche 

empfohlen

BacTALERT Blutkultur-Medien ohne Belüftung 

mit Liquid Emulsion Sensor 

Bitte beachten Sie: 

Blutkulturflaschen sofort ins Labor bringen 

Im Falle einer verzögerten Bearbeitung bei 

Raumtemperatur lagern 

(Ausnahme: pädiatrische Medien bei 36 1 °C) 

BacT/ALERT FAN (Medien mit Aktivkohle für antibiotisch vorbehandelte Patienten) 

� BacT/ALERT FA (FAN aerob mit hellgrüner Verschlusskappe) 

� BacT/ALERT FN (FAN anaerob mit hellbrauner Verschlusskappe) 

Die geeignete Füllmenge beträgt 5 – 10 ml. 

BacT/ALERT Standard (Medien für Patienten ohne antibiotisch Vorbehandlung) 

� BacT/ALERT SA (Standard aerob mit blauer Verschlusskappe) 

� BacT/ALERT SN (Standard anaerob mit lila Verschlusskappe) 

Die geeignete Füllmenge beträgt 5 – 10 ml. 

BacT/ALERT Pediatric (Medien mit Aktivkohle für Neugeborene und Kleinkinder) 

� BacT/ALERT PF (Aerobes Medium mit gelber Verschlusskappe) 

Die geeignete Füllmenge beträgt 0,5 – 4 ml.

2.3.1 Arbeitsanleitung für BacT/ALERT Blutkulturflaschen 

Vorbereitung der BacT/ALERT Blutkulturflaschen 

a. Die BacT/ALERT Blutkulturflaschen sollten Raumtemperatur haben. 

b. Blutkulturflaschen mit Patientendaten versehen. 

Achtung: 

Patientenetiketten bitte unterhalb des Barcodes aufkleben, so dass dieser im Labor 

problemlos von der Flasche entfernt werden kann. 

Bitte das Patientenetikett Diesen Teil des Etiketts 

hier aufkleben nicht überkleben 

� � 

c. Plastikkappen (Flip-off) von BacT/ALERT Blutkulturflaschen entfernen. 

d. Gummistopfen der Blutkulturflaschen desinfizieren 

Patientenvorbereitung 

a. Hautpunktionsstelle desinfizieren (30 Sekunden zugelassenes Desinfektionsmittel benutzen). 

b. Haut trocknen lassen oder mit sterilem Tupfer abwischen. 

c. Punktionsstelle danach nicht mehr berühren. 

Blutentnahme 

a. Blut unter aseptischen Bedingungen vom Patienten entnehmen (z.B. steriles 

Überleitungsschlauchsystem, Spritze etc.). ACHTUNG: Die Blutkulturflasche nicht belüften. 

b. Maximal 10 ml Blut in die BacT/ALERT Blutkulturflaschen inokulieren. Die Strichmarkierung auf 

dem Etikett der Flasche erlaubt das Ablesen der nötigen Füllmenge. In der Blutkulturflasche 

besteht Unterdruck. 

c. Die pädiatrische BacT/ALERT Flaschen mit maximal 4 ml Blut befüllen. 

Die BacT/ALERT Blutkulturflaschen unverzüglich ins Labor bringen! 

Begleitinformation (neben den üblichen Angaben) 

- Entnahmeort (periphere Vene, ZVK u.a..) 

- Verdachtsdiagnose (z.B. Endokarditis, Brucellose u.a.; hier erfolgt eine längere Bebrütung) 

- Telefonische Durchwahl des Einsenders

2.4 Punktate (Pleura-, Perikard-, Douglas-, Aszitespunktat u.a.) 

- Material in sterilen Röhrchen, Röhrchen mit Transportmedium oder ggf. in Blutkulturflaschen einsenden. 

- Bei Einsendung in Blutkulturflaschen immer einen Teil des Punktates nativ im sterilen Röhrchen 

einsenden. 

- Unbedingt Entnahmeort angeben. 

- Seröse Körperhöhlen sind physiologischerweise steril. Jeder nachgewiesene Keim ist daher als Erreger 

anzusehen. 

2.4.1 Durchführung 

Punktion unter streng aseptischen Kautelen. Gründliche Desinfektion des Punktionsgebietes. Entnahme von 5 - 10 

ml oder mehr in ein steriles Röhrchen oder ein Röhrchen mit Transportmedium . 

In einer Spritze aspirierte Eiterproben können auch in der Spritze belassen werden und nach Verschließen der 

Kanüle mit einem sterilen Stopfen direkt verschickt werden. 

Geringe Punktatmengen können auch mit einem Tupfer aufgenommen werden und im Transportmedium 

eingesandt werden. 

2.5 Wundsekrete , Wundabstriche, Eiter und Exsudate, Gewebe 

Bei Wundinfektionen sind folgende klinische Angaben auf dem Einsendeschein zu vermerken 

1. Art der Materialentnahme: z.B. intraoperativ 

2. Art der Wunde: z.B. chirurgische Wundinfektion, 

akute Wundinfektion (z.B. Abszeß), 

Bisswunde, 

Verbrennungswunde, 

Diabetische Wundinfektion und 

Dekubituswunde 

2.5.1 Durchführung 

Entnahme aus geschlossenen Infektionsprozessen 

Materialgewinnung durch Punktion und Sekretgewinnung (möglichst vor chirurgischer Eröffnung), ggf. 

Abszessspaltung und Entnahme des Abszessinhaltes in ein steriles Transportgefäß. 

Auch Gewebestückchen aus dem Granulationsgewebe der Abszesswand (in einem getrennten 

Transportgefäß) mit einsenden. 

Entnahme aus offenen Wunden 

Zuerst oberflächliches Sekret, nekrotische und fibrinöse Beläge mit einem Tupfer entfernen (hier 

überwiegend sekundär besiedelnde Mikroorganismen). 

Materialgewinnung erfolgt aus dem Wundgrund und aus den Randbezirken der Läsion. 

Material mit einem Tupfer entnehmen und nativ oder im Transportmedium einsenden. Bei trockenen 

Wunden Tupfer mit steriler physiologischer Kochsalzlösung anfeuchten. 

Entnahme aus Fistel 

Bei Fisteln erst das oberflächlich austretende Sekret entfernen. Fistelöffnung mit Alkohol desinfizieren und 

Material aus der Tiefe des Fistelganges entnehmen (mit einem eingeführten dünnen Katheter aspirieren 

oder mit einer feinen Kürette herausschaben). 

intraoperativ entnommenes Material 

Gewebe kann bei schnellem Transport in 1 – 2 ml steriler physiologischer Kochsalzlösung eingesandt 

werden. 

2.6 Stuhlproben 

für bakteriologische Untersuchungen 

Mit dem im Stuhlröhrchen enthaltenen Löffel eine haselnussgroße (ca.1 - 5 ml) Stuhlmenge entnehmen und im 

Stuhlröhrchen einsenden. Blutige, schleimige und eitrige Anteile mit entnehmen. Mehrere Stuhlproben (z. B. von 

drei unterschiedlichen Darmentleerungen) erhöhen die Nachweisrate. 

Zum Nachweis darmpathogener Bakterien Rektalabstriche nur einsenden, wenn Stuhl nicht gewonnen werden 

kann. Hiermit ist nur eine kulturelle bakteriologische Diagnostik möglich. 

Tupfer bis hinter den Analschließmuskel einführen und dort mehrmals drehen. Den Tupfer möglichst umgehend in 

das Labor bringen. 

Stuhluntersuchungen auf Salmonellen, Shigellen, Campylobacter und Yersinien erfolgen routinemäßig mit der 

Basisuntersuchung „Allgemeine pathogene Keime und ggf. Antibiogramm“. Bei Kindern bis zu einem Jahr wird der 

Nachweis enteropathogener E. coli mit einbezogen.

Jeder Erreger kann auch einzeln angefordert werden. 

Bei Verdacht auf Typhus und Paratyphus sollten in der ersten Krankheitswoche parallel Blutkulturen mit angelegt 

werden. 

Bei Verdacht auf Cholera Probe telefonisch ankündigen. 

Bei Nahrungsmittelvergiftungen mit entsprechend kontaminierten Speisen gelingt die Anzüchtung dieser Erreger 

(z. B. Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens, Bacillus cereus, Clostridium botulinum) aus dem Stuhl 

seltener. Nahrungsmittel oder Erbrochenes sind zum Nachweis dieser Erreger oder deren Toxine besser geeignet. 

Hier bitte Rücksprache mit dem Labor halten. 

2.7 Atemwegssekrete 

Sputum, Tracheal-, Bronchialsekret, Bronchoalveoläre Lavage (BAL) 

Bei der Gewinnung von Sputum wird das Sekret zwangsläufig mit der Mund- und Rachenflora kontaminiert. 

Deshalb sind Tracheal-, Bronchialsekrete und bronchoalveoläre Lavage 

diagnostisch überlegen. 

2.7.1 Sputum 

Am besten geeignet ist Morgensputum. Den Mund mehrmals mit Leitungswasser ausspülen. Anschließend sofort 

das Sekret aus den tiefen Atemwegen in den Sputumbehälter abhusten. Wenn möglich nur makroskopisch eitriges 

Sputum einsenden. 

2.7.2 Tracheal-, Bronchialsekret 

Das Sekret über einen Tubus oder Katheter gewinnen. Entnahme möglichst unmittelbar nach Tubuswechsel, da 

auch hier eine oropharyngeale Kontamination oft nicht zu vermeiden ist. Evtl. Absaugkatheter abschneiden und in 

einem gesonderten sterilen Gefäß einsenden. 

2.7.3 Bronchoskopische Materialgewinnung 

Isotone Kochsalzlösung über ein Bronchoskop ins Bronchuslumen einbringen. Kochsalzlösung wieder mit dem 

Bronchoskop aspirieren und in einem sterilen dicht verschlossenem Gefäß einsenden. 

2.7.4 Bürstenabstrich 

Kontaminationsarme Probengewinnung aus dem Bereich der unteren Atemwege mittels Bronchialbürste. 

Einmalkatheter mit Bürstensonde an die Abstrichstelle heranführen. Abstrich entnehmen. Bürstensonde im 

Katheter retrahieren und dann Bürste steril über einem sterilen Röhrchen abschneiden. 

2.8 Abstriche 

2.8.1 Rachen-, Tonsillen- und Nasopharyngealabstriche 

Zunge mit Spatel herunterdrücken und ohne Berührung der umgebenden Schleimhäute den entzündeten Bereich 

mehrmals mit einem sterilen Abstrichtupfer abstreichen. Der Tupfer kann vorher mit steriler Kochsalzlösung 

angefeuchtet werden. Tupfer in das Transportmedium einführen. 

2.8.2 Verdacht auf Angina Plaut-Vincent 

Nachweis erfolgt nur mikroskopisch 

Am besten mit einem Tupfer einen Ausstrich auf einem Objektträger anfertigen und luftgetrocknet einsenden. Auf 

dem Begleitschein Angina Plaut-Vincent extra vermerken. 

2.8.3 Verdacht auf Diphtherie 

Sekret unter der abgehobenen Pseudomembran entnehmen 

Diagnose auf dem Begleitschein extra vermerken und Labor vorher telefonisch informieren. 

2.8.4 Verdacht auf Keuchhusten 

Einen Nasopharyngealabstrich mit einem Calciumalginattupfer durchführen. Kontamination mit Standortflora 

vermeiden. 

2.8.5 Bei MRSA- und VRE-Screening 

unbedingt die Untersuchung „ MRSA-Screening“ bzw. „VRE-Screening“ auf dem Einsendeschein kennzeichnen.

2.8.6 Mundabstriche 

Material unter Drehen des sterilen Tupfers entnehmen. Bei Mundabstrichen werden in der Regel Bakterien der 

physiologischen Mundflora nachgewiesen. 

Bei Verdacht auf Mundsoor die Untersuchung auf Pilze auf dem Einsendeschein vermerken. 

2.8.7 Hautabstriche 

Hautabstriche sind nur bei Vorliegen offener Hauteffloreszenzen sinnvoll. Eine Kontamination der 

Untersuchungsprobe mit Bakterien der physiologischen Hautflora ist meist unvermeidlich. 

2.8.8 Ohrabstriche 

Gehörgangsabstrich 

Ohrmuschel desinfizieren und Material aus dem entzündeten Bereich unter vorsichtigem Drehen des 

Abstrichtupfers entnehmen. Bei tiefen Gehörgangsabstrichen möglichst Otoskop verwenden. 

Bei Verdacht auf Mykose Hautschuppen aus dem Gehörgang mit einem sterilen Spatel entnehmen und in einem 

sterilen Schraubröhrchen einsenden. 

Mittelohrsekret 

Bei geschlossenem Trommelfell zuerst den Gehörgang mit physiologischer Kochsalzlösung säubern und durch 

Punktion oder Inzision des Trommelfells Mittelohrsekret mit einer sterilen Spritze aspirieren, mit einem 

Verschlusskonus dicht verschließen und einsenden. 

2.8.9 Genitalabstriche, -sekrete 

(Urethral-, Prostata-, Vaginal-, Zervikalsekret) 

Die Sekrete müssen gezielt aus dem Infektionsbereich, also möglichst ohne Kontamination mit der Normalflora der 

Genitalschleimhäute, gewonnen werden. 

2.8.10 Urethralsekret 

Am besten morgens vor der ersten Miktion. Nach vorsichtiger Reinigung der Harnröhrenöffnung mit Wasser und 

Seife mit einem sterilen Tupfer trocknen. Die Harnröhre von hinten nach vorn ausstreichen und das austretende 

Sekret mit einem Abstrichtupfer aufnehmen. Erscheint kein Sekret wird der Tupfer vorsichtig ca. 2 cm in die 

Urethra vorgeschoben und langsam gedreht und unter weiterem Drehen wieder herausgezogen. 

Für ein Direktpräparat den Tupfer auf einem sterilen Objektträger abrollen und mit ins Labor einsenden. 

2.8.11 Prostatasekret / Ejakulat 

Nach Reinigung der Harnröhrenmündung wird die Prostata von Rectum aus massiert und das ausfließende 

Exprimat im sterilen Gefäß aufgefangen. 

2.8.12 Cervixabstrich 

Um eine Kontamination durch die Begleitflora zu vermeiden, sollte der Abstrich unter Spekulum-Einstellung 

erfolgen. Zervikalöffnung mit Wattetupfer trocknen. Mit sterilem Tupfer Zervikalschleim entnehmen. 

2.8.13 Vaginalabstrich 

Material mit einem sterilen Tupfer von Scheidenwand oder direkt vom Spekulum gewinnen. Kontamination mit 

Standortflora vermeiden. 

2.9 Sonderfälle 

2.9.1 Neisseria gonorrhoeae 

Für den Nachweis von Gonokokken ein spezielles Transportmedium oder einen GO-Slide (Fa. Becton, Dickinson 

and Company) verwenden. Für ein Direktpräparat den Tupfer auf einem sterilen Objektträger abrollen und mit ins 

Labor senden. 

2.9.2 Urogenitale Mykoplasmen 

Spezialtransportmedium mit Tupfer beimpfen und ins Labor einsenden. 

2.9.3 Katheterspitzen / Drainagespitzen 

Insertionsstelle desinfizieren, Katheter / Drainage ziehen, Spitze (ca. 4 - 6 cm) abschneiden, in ein steriles Gefäß 

geben und einsenden.

2.9.4 Tuberkulosediagnostik 

Bei jedem Tuberkuloseverdacht sollte angestrebt werden: 

- Nachweis der Erreger mittels Mikroskopie 

- Kultur 

Zusätzlich kann aus demselben Untersuchungsmaterial eine PCR durchgeführt werden. Nur in Ausnahmefällen ist 

die PCR ohne Kultur anzusetzen. 

Untersuchungsmaterial Menge Bemerkungen 

Sputum 2 - 10 ml 3 Proben, Max. 1 Stunde sammeln, keinen Speichel, bei 

Kindern Magensaft 

Bronchialsekret 2 - 10 ml 

BAL, Pleurapunktat 10 - 30 ml 

Magensaft 5 - 30 ml Patient nüchtern, mittels einer Sonde aspirieren 

Urin 30 - 50 ml 3 Proben, Morgenurin, Mittelstrahlurin 

Liquor mindestens 5 ml 

Lymphknoten und 

Gewebeproben 

3 Parasitologische Untersuchungen 

3.1 Mikroskopischer Nachweis von Blutparasiten 

(Malaria, Trypanosomen, Babesien und Filarien) 

entsprechendes Gewebe entnehmen und in einem sterilen 

Schraubgefäß einsenden (evtl. etwas physiologische 

Kochsalzlösung hinzugeben) 

Zur Diagnostik ist EDTA-Blut zur Anfertigung eines Blutausstriches und eines sog. “Dicken Tropfens“ einzusenden. 

EDTA-Blut wird des Weiteren für den Malariaschnelltest zur Unterscheidung von Plasmodium falciparum zu 

anderen Plasmodien eingesetzt. 

Hinweis: ein einmaliger negativer mikroskopischer Befund schließt eine Malaria nicht aus. Deshalb sind 

mehrmalige Kontrolluntersuchungen erforderlich. 

3.2 parasitologische Untersuchungen aus Stuhl 

Stuhlgefäß mindestens zu einem Drittel mit Nativstuhl füllen. Es werden drei Stuhlproben im Abstand von 1 bis 3 

Tagen empfohlen. 

Der Stuhl wird mikroskopisch auf Protozoen und Wurmeier (nach Anreicherungsverfahren) untersucht sowie in 

Abhängigkeit von der Verdachtsdiagnose zum serologischen Antigennachweis genutzt. 

Zur mikroskopischen Diagnostik von Amöben und Giardien sollte die Stuhlprobe warm und innerhalb von 60 

Minuten ins Labor transportiert werden (bewegliche Trophozoiten sind etwa eine Stunde nachweisbar). Bei 

asymptomatischer Amöbeninfektion sind die Zysten auch im 24 Stunden bei Raumtemperatur gelagerten Stuhl 

nachweisbar. 

Zum Nachweis von Enterobius vermicularis ein perianales Abklatschpräparat mit Hilfe eines Klarsichtklebestreifens 

anfertigen (Perianalbereich vorher nicht reinigen), Klebestreifen anschließend auf einem Objektträger aufbringen. 

3.2.1 Duodenalsaft 

Falls bei Verdacht auf Giardien trotz wiederholter Stuhluntersuchungen keine Giardien nachweisbar waren, sollte 

Duodenalsaft eingesandt werden. 

Duodenalsaft eignet sich auch zum Nachweis hepatischer Trematoden. 

Material nicht kühlen 

3.2.2 Urin 

Sammelurin (vor dem Versand kann durch Zentrifugieren Sediment hergestellt werden) 

Zum Nachweis von Schistosoma-haematobium-Eiern empfiehlt sich ein 3 - 4 stündiger Sammelurin, der bis zum 

frühen Nachmittag gewonnen wurde (maximale Eiausscheidung).

3.2.3 Sputum 

Zum Nachweis von Helminthen, die als Larve einen pulmonalen Wanderwerg durchlaufen (Ascaris, Hakenwürmer, 

Strongyloides), sowie von Eiern des Lungenegels bei respiratorischen Symptomen, geeignet. 

3.3 Mykologische Untersuchungen 

3.3.1 Nägel, Hautschuppen, Haare 

Hautschuppen aus Übergangsbereich zwischen krankem und gesundem Gewebe mit scharfem Löffel abschaben. 

In sterilem Gefäß einsenden. 

Haare aus dem befallenen Bereich mit Wurzel gewinnen und einsenden. 

Von befallenem Nagel mit Skalpell Nagelspäne abschaben und einsenden. 

Die Untersuchung auf Dermatophyten erfolgt in der Universitätsklinik und Poliklinik für Dermatologie und 

Venerologie.

Präanalytik / Infektionsserologie und Molekularbiologie 

Für die Infektionsserologie ist Serum, für die Molekularbiologie Plasma das 

gebräuchlichste Material. Weitere Probenmaterialien sind Liquor, BAL, Abstriche, Biopsien, Urin und Stuhl. 

Gewinnung und Transport des Untersuchungsmaterials 

Nach Desinfektion des entsprechenden Hautbereiches wird dem Patienten bzw. dem Hirntoten im Fall der DSO 

Blut entnommen, das in verschiedenen Röhrchen aufgefangen wird: Serumröhrchen bzw. Röhrchen mit 

Gerinnungshemmern wie z.B. EDTA. Liquor wird nach Punktion, Abstriche, Biopsien, Urin und Stuhl werden nach 

Gewinnung in ein steriles Gefäß überführt. 

Alle Materialien werden zur eindeutigen Zuordnung zu den Patienten etikettiert. 

Die Proben werden durch den klinikinternen Transportdienst zu den einzelnen Abteilungen gebracht und dort 

gleich bearbeitet bzw. im Kühlschrank gelagert. 

Probenvorbereitung 

Serum-Monovetten: 

Werden 5 min bei 4000 U/min zentrifugiert. Nach der Zentrifugation wird das Serum mit einer Einmalpipette 

abgenommen und in ein dafür vorgesehenes, mit Namen beschriftetes und laufender Labornummer beklebtes 

Röhrchen (5 ml) eingefüllt. 

Liquor, Urin, BAL: 

Keine Vorbehandlung nötig. Liquor, Urin und BAL werden mit einer Einmalpipette abgenommen und in ein dafür 

vorgesehenes, mit Namen beschriftetes und laufender Labornummer beklebtes Röhrchen (5 ml) eingefüllt. 

Stuhl: 

Keine Vorbehandlung nötig. Der Stuhl verbleibt im Originalröhrchen und wird am Stuhlplatz mit laufender 

Labornummer beklebt. Erfolgt der Stuhlanasatz nicht am gleichen Tag, so wird der Stuhl bei -20 °C eingefroren. 

Abstriche: 

Alle Abstriche, außer für Chlamydia trachomatis und Culturetten, werden mit jeweils 2 ml PBS-Puffer in einem 

verschraubbaren dafür vorgesehenen, mit Namen beschrifteten und laufender Labornummer beklebten 

barcodierten Gefäß eingeweicht. Verbleibt der Abstrich im Originalröhrchen, so wird diese mit laufender 

Labornummer beklebt. 

EDTA-Monovetten: 

Wird nach angeforderter Untersuchung als Vollblut verarbeitet oder 5 min bei 4000 U/min zentrifugiert. 

Anschließend wird mit einer Einmalpipette das entstandene Plasma abgenommen und in ein dafür vorgesehenes, 

mit Namen beschriftetes und mit laufender Labornummer beklebtes Röhrchen (1,5 ml) eingefüllt. 

Nach der Probenauftragserfassung werden alle Proben noch mit einem Barcode beklebt.

Notizen

Notizen

Abkürzungsverzeichnis 

AZ Allgemeinzustand 

BAL Bronchoalveoläre Lavage 

CMV Zytomegalievirus 

CRP C-reaktives Protein 

D Durchläufer (Arzneimittel; kein Lagerartikel) 

DK Dauerkatheter 

dl Deziliter 

ESBL Extended Spectrum Beta-Lactamase Bildner 

FEV Forciertes expiratorisches Volumen 

FVC Forcierte Vitalkapazität 

g Gramm (1 g = 1000 mg) 

GFR Gomeruläre Filtrationsrate 

HD Hämodialyse 

HSV Herpes simplex Virus 

I.E. Internationale Einheiten 

i.m. intramuskulär 

i.v. intravenös 

IgA Immunglobulin A 

IgG Immunglobulin G 

IgM Immunglobulin M 

IGRA Interferon-Gamma-Release-Assay 

kg Kilogramm 

KG Körpergewicht 

KM Knochenmark 

KS Kühlschrank (2-8°C) 

l Liter 

lip. liposomal 

LM Lösungsmittel 

MAI Mycobacterium avium-intracellulare Komplex 

max. maximal 

mg Milligramm (1 mg = 1000μg) 

min. Minute 

mind. mindestens 

ML Messlöffel 

MRE Multiresistente Erreger 

MRSA Methicillin resistenter Staphylococcus aureus 

p.o. peroral 

PCP Pneumocystis jiroveci Pneumonie 

PCR Polymerase-Ketten-Reaktion 

RS Rücksprache 

RT Raumtemperatur 

S Sonderbeschaffung (Arzneimittel) 

SL Stammlösung 

VRE Vancomycin resistente Enterokokken 

VZV Varicella zoster Virus 

WW Wechselwirkungen

Inhaltsverzeichnis 

Allgemeine Hinweise für die Anwendung von Antiinfektiva ............................................... 6 

Abschnitt I - Therapie ........................................................................................................ 8 

1 Abdominalinfektionen ................................................................................................ 8 

2 Leber- und Gallenwegsinfektionen ............................................................................ 13 

3 HIV-Infektion ............................................................................................................. 14 

4 Herpesvirus-Infektionen (HSV, VZV, CMV) bei Erwachsenen ..................................... 15 

5 Urogenitalinfektionen ............................................................................................... 18 

6 Haut- und Weichteilinfektionen ................................................................................ 21 

7 Knochen- und Gelenkinfektionen .............................................................................. 24 

8 Endokarditis .............................................................................................................. 27 

9 Atemwegsinfektionen ............................................................................................... 29 

10 Schwere Sepsis ohne erkennbare Eintrittspforte / Fokus ...................................... 37 

11 Katheterinfektionen .............................................................................................. 40 

12 Neutropenie und Fieber ........................................................................................ 42 

13 Fieber unklarer Genese (FUG) bzw. Fever of Unknown Origin (FUO) ..................... 46 

14 Malaria .................................................................................................................. 48 

15 Meningitis ............................................................................................................. 51 

16 Hals-Nasen-Ohren-Infektionen .............................................................................. 54 

17 Borreliose .............................................................................................................. 59 

18 Pilzinfektionen ...................................................................................................... 60 

19 Infektionen in der Schwangerschaft ...................................................................... 64 

20 Vorgehen bei Beta-Laktam-Allergie in der Anamnese ........................................... 67 

21 Multiresistente Erreger (MRSA, VRE, ESBL-Bildner, Stenotrophomonas) ............... 70 

Abschnitt II - Prophylaxe ................................................................................................. 80 

1 Endokarditisprophylaxe ............................................................................................ 80 

2 Perioperative Prophylaxe .......................................................................................... 81 

3 Umgebungsprophylaxe bei Meningitis ...................................................................... 84 

4 Prophylaxe nach Bissverletzungen (inkl. Rabies) ....................................................... 85 

5 Postexpositionsprophylaxe (HIV, Hepatitis B, Hepatitis C) ........................................ 86 

Abschnitt III - Infektionen im Kindesalter ........................................................................ 89 

1 Typische Infektionen im Kindesalter ......................................................................... 89 

2 Spezielle Infektionen im Kindesalter ......................................................................... 95 

3 Infektionen bei immunsupprimierten Kindern .......................................................... 98 

4 Patienten mit Cystischer Fibrose (CF) ........................................................................ 99 

5 Perioperative Prophylaxe ........................................................................................ 100 

Abschnitt IV - Arzneimittel ............................................................................................ 101 

1 Dosierungen bei Niereninsuffizienz ......................................................................... 101 

2 Tagestherapiekosten ............................................................................................... 104 

3 Zubereitung und Verabreichung von parenteralen Antiinfektiva ............................ 107 

Abschnitt V - Mikrobiologie .......................................................................................... 113 

1 Präanalytik-Bakteriologie ........................................................................................ 113 

2 Untersuchungsmaterialien ...................................................................................... 114 

3 Parasitologische Untersuchungen ........................................................................... 121 

Abkürzungsverzeichnis ................................................................................................... 127

Antiinfektiva-Leitfaden

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